Перечень практических навыков для студентов

1. Основные правила поведения в бактериологической лаборатории.
2. Правила забора материала для микробиологических исследований (кровь, гной, слизь из носоглотки, ликвор, мокрота).
3. Правила забора материала, хранения и транспортировки при ООИ.
4. Составить направление на микробиологическое исследование.
5. Дезинфекция в микробиологической лаборатории: рук, рабочего места, выделений больного, предметных и покровных стекол.
6. Подготовка посуды к стерилизации.
7. Этапы приготовления мазка.
8. Основные правила микроскопии.
9. Окраска по Циль – Нильсену.
10. Определение подвижности микроорганизмов – методом «раздавленной капли» и «висячей капли».
11. Этапы приготовления питательных сред.
12. Правила посева на жидкие питательные среды.
13. Правила посева на плотные питательные среды.
14. Методы культивирования анаэробов.
15. Выделение чистой культуры аэробов(механические и биологические методы).
16. Выделение чистой культуры анаэробов.
17. Заражение куриного эмбриона.
18. Окраска мазка по Грамму.
19. Постановка серологических реакций – РА на стекле.
20. Постановка и учет объемной РА. Видаля и Вейгля.
21. Постановка и учет РП (по Асколи).
22. Учет РН токсина антитоксином (по Оухтерлони).
23. Постановка и учет РСК (по Борде-Жангу).
24. Определение титра и рабочей дозы комплемента.
25. Постановка и учет РГА (реакции гемагглютинации).
26. Определение чувствительности микробов к антибиотикам – методом «бумажных дисков».
27. Определение фаготипа (при стафилококковой инфекции).
28. Реакция фаголизиса
29. ИФА
30. ПЦР
31. РИФ. Использование при диагностике гриппа.
32. РПГА – для определения напряженности противодифтерийного поствакцинального иммунитета.
33. Р. флокуляции
34. РН в органах лабораторных животных, курином эмбрионе, тканевых культурах. РН для идентификации вируса клещевого энцефалита.
35. РГТА.
36. Опсонофагоцитарная реакция.