РЕГЛАМЕНТ 4 page

7.2.4. Питательные среды для выделения чумного микроба

Для выделения чумного микроба используют слабощелочной (pH 7,0 - 7,2) питательный агар с аминным азотом 60 - 120 мг%. Для диагностических целей могут быть использованы среды лабораторного изготовления, а также коммерческие сухие среды, имеющие номер госрегистрации. Каждая серия агара должна быть проверена на чувствительность к росту чумного микроба согласно действующим нормативно-методическим документам. Срок хранения агара не более 2 месяцев, после чего он должен проходить переконтроль для продления срока годности еще на 1 месяц. Питательные среды должны храниться в темном месте при постоянной температуре (от 4 до 20 °C). Перепады температуры снижают качество питательных сред.

При диагностике чумы используют селективные среды, которые содержат стимуляторы роста чумного микроба и ингибиторы посторонней флоры.

В качестве стимуляторов роста чумного микроба используют сульфит натрия в концентрации 1:4000 (1 мл 2,5%-го раствора на 100 мл агара), гемолизированную кровь в концентрации 0,01 - 1,00%, согласно инструкции по применению препарата. В очагах, где циркулируют тиаминзависимые штаммы, в качестве стимулятора роста используют витамин B1 (в концентрации 0,0001 мг на 100 мл среды или синтетическую среду 199 (3 мл на 100 мл среды).

Для подавления роста посторонней микрофлоры используют генцианвиолет в концентрации 1:100000 - 1:800000. Рабочую дозу определяют для каждой серии препарата перед обследовательским сезоном и указывают в паспорте на рабочий раствор генцианвиолета.

Помимо этого, для ингибирования посторонней флоры могут быть использованы теллурит калия в концентрации 1:300000, дезоксихолат натрия - 1 мг%, фосфомицин 50 - 100 мкг/мл.

7.2.5. Биологический метод исследования грызунов

В качестве биопробных животных могут быть использованы белые мыши и морские свинки.

Способ приготовления суспензий для биопроб описан выше. Заражают биопробных животных подкожно в паховую область; белым мышам вводят 0,5 мл суспензии, морским свинкам - 1,0 мл. При исследовании сильно загрязненного материала (загнившие трупы, субстраты нор, помет) биопробных животных заражают накожно.

Павших биопробных животных исследуют, проводя вскрытие по полной схеме (отсепаровка кожи, осмотр и посев лимфоузлов, посев всех органов, крови, серологическое исследование на наличие антигена). От павшего биопробного животного, до выяснения причины гибели, обязательно ставят пассажи. После обеззараживания суспензия органов павшего биопробного животного может быть исследована в ПЦР.

Биопробных животных, выживших после заражения, забивают через 6 суток с полным бактериологическим исследованием без пассажа. При исследовании материала из природных очагов чумы и туляремии биопробных животных забивают на 8 - 9-е сутки.

7.2.6. Идентификация выделенных культур чумного микроба

Первичная (предварительная) идентификация выделенной культуры проводится сразу после ее выделения по следующим признакам:

- морфология роста на питательном агаре и бульоне;

- морфология клетки, характер окраски по Граму;

- лизис диагностическими бактериофагами Л-413С, Покровской;

- подвижность в 0,4%-м агаре;

- ферментация мочевины (при отсутствии ЦДС), рамнозы, глицерина;

- характерный рост на среде ЦДС (отсутствие способности к ферментации мочевины и лактозы);

- чувствительность к антибиотикам методом дисков (при выделении первой культуры).

Окончательная идентификация и изучение культуры чумного микроба проводится в стационарной лаборатории противочумной станции или института, имеющих разрешение на проведение работы с возбудителями I группы патогенности по следующим признакам:

- наличие FI;

- биохимическая активность (пестрый ряд), подвижность;

- вирулентность для лабораторных животных и in vitro;

- плазмидный состав (pCad, pPst, pFra);

- способность к нитрификации и денитрификации;

- пестицин-фибринолизин-плазмокоагулазная активность;

- чувствительность к пестицину 1;

- питательная потребность при необходимости.

7.2.7. Серологический метод исследования полевого материала

Серологические реакции направлены на поиск антител к специфическому антигену FI в сыворотке крови у носителей чумы, наземных хищников, домашних животных и антигена в тканях и органах зверьков с патолого-анатомическими изменениями, их трупов, в субстратах нор теплокровных, остатках пищи и погадках хищных птиц, субстратах гнезд, в помете носителей, почве.

При выполнении серологических исследований должны быть соблюдены следующие правила:

- серологические реакции должны ставить только с обеззараженным материалом;

- все иммунобиологические и диагностические препараты должны иметь номера госрегистрации;

- планшеты, пипетки, капельницы, шприцы должны быть вымыты моющим средством, хорошо промыты обильным количеством воды, последнее ополаскивание проводят дистиллированной водой; луночки планшетов должны быть гладкими и прозрачными;

- сыворотки человека и животных (верблюда, кошек, собак), а также мутные сыворотки и с признаками гемолиза необходимо перед исследованием адсорбировать 50%-й взвесью формалинизированных, но не сенсибилизированных эритроцитов;

- все ингредиенты для серологических реакций должны быть оттитрованы (не реже 1 раза в 2 недели), формалин перед обследовательским сезоном адсорбирован мелом (1:1), для инактивации кислых продуктов в коммерческом препарате, растворы формалина и мертиолята натрия - проверены на антибактериальную активность;

- все исследования проводят согласно действующим инструктивно-методическим материалам по применению серологических методов диагностики при эпизоотологическом обследовании природных очагов чумы.

Для поиска антител исследуют сыворотки, смывы из сердца и крупных

сосудов или высушенные на фильтровальных бумажках образцы крови и сыворотки

животных. Поиск антител осуществляют у относительно резистентных к чумному

микробу зверьков (малый, длиннохвостый, горный, даурский суслики,

полуденная песчанка с левого берега Волги, даурская пищуха, мелкие куньи и

др.). Для обнаружения антител используют РНГА с антигенным диагностикумом,

а также РНАг с иммуноглобулиновым диагностикумом. При массовых

исследованиях реакции ставят в два этапа: вначале, каждая из реакций

ставится в двух луночках и только при положительных результатах ставят

развернутые реакции для определения их титра. Система однонаправленных

реакций весьма информативна, т.к. по соотношению титров двух реакций

(превышение титра РНАг) можно судить о давности контакта зверька с

микробом, а при достаточно большом количестве исследований - о фазе

эпизоотии на данном участке территории. С этой же целью ставят пробу с

восстановителем 2-меркаптэтанолом (CH OHCH 3H), которая дифференцирует

2 2

макро- и микроглобулины.

При сомнительных результатах реакции повторяют после адсорбции исследуемого материала 50%-й взвесью формалинизированных, но несенсибилизированных эритроцитов, параллельно ставят идентичные реакции с гетерологичными диагностикумами (туляремийный, бруцеллезный, холерный и др.).

Для поиска антигена готовят суспензии из исследуемого материала, добавляя к нему раствор 9%-го хлористого натрия с 2% формалина. На 1 часть субстрата добавляют 10 частей раствора. После отстаивания в течение не менее 3 ч (лучше 20 - 24 ч) отбирают надосадочную жидкость и ставят серологические реакции: РНГА и РТНГА с иммуноглобулиновым диагностикумом и РНАт с антигенным диагностикумом.

С целью подтверждения специфичности результатов следует тот же материал использовать в системе серологических реакций (РНГА-РНАт) с гетерологичными диагностикумами (туляремийный, бруцеллезный, холерный и др.).

Тактика применения иммуноферментного анализа для поиска антигена FI и антител к нему такая же, как при использовании иммуносуспензионных методов.

7.2.8. Молекулярно-генетический метод исследования

полевого материала

Полимеразная цепная реакция используется при углубленном эпизоотологическом обследовании территории (преимущественно в пунктах долговременного наблюдения). Исследованию подлежат суспензии органов носителей чумы (трупы павших зверьков, верблюдов) с характерными патолого-анатомическими изменениями, а также при необходимости суспензии эктопаразитов, субстраты гнезд грызунов, погадки и остатки пищи хищных птиц, пробы почвы и др.

Для проведения генодиагностического анализа применяют "Тест-систему для выявления ДНК Y. pestis методом полимеразной цепной реакции (ПЦР)" производства ФГУЗ РосНИПЧИ "Микроб", г. Саратов. Выделение ДНК, проведение ПЦР и учет результатов осуществляют в соответствии с инструкцией по применению тест-системы. Предварительно исследуемый материал обеззараживают. К подготовленным суспензиям добавляют мертиолят натрия до конечной концентрации 1:10000 и прогревают при 56 °C в течение 30 мин. Далее 0,1 мл пробы переносят в микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 мл, добавляют лизирующий раствор на основе 6М гуанидинтиоцианата в объеме, указанном в инструкции к тест-системе, и инкубируют в течение 15 мин. при температуре 65 °C.

При исследовании биологического материала и объектов окружающей среды ПЦР может быть использована для характеристики плазмидного профиля штаммов возбудителя чумы, его вирулентности, а также при идентификации и типировании выделенных культур.

7.3. Оценка и прогнозирование эпизоотической активности

очагов чумы, составление эпизоотологического

обзора и оперативных сводок

Оценку эпизоотической активности очагов чумы осуществляют на основании материалов эпизоотологического обследования. По площади и количеству выявленных эпизоотических участков оценивают характер эпизоотии (локальная, разлитая). Кроме количественных показателей важна информация о вовлечении в эпизоотический процесс разных видов носителей и переносчиков. Для оценки эпидемической значимости выявленной эпизоотии имеет значение участие синантропных грызунов и блох жилищ человека в эпизоотическом процессе.

Для каждого очага чумы должны быть разработаны конкретные прогностические признаки, которые позволяют предвидеть текущие изменения эпизоотической активности очага.

В течение года ход выполнения противочумной станцией плановых показателей отражают в ежемесячных оперативных сводках о проведенных санитарно-профилактических противочумных мероприятиях, формы которых разрабатываются ФГУЗ "Противочумный центр" Роспотребнадзора.

Одним из основных итоговых документов, составляемых каждой противочумной станцией по результатам эпизоотологического обследования обслуживаемой территории за прошедший календарный год, является обзор и прогноз эпизоотического состояния природных очагов чумы. Обзор и прогноз служат источником информации при планировании профилактических мероприятий на очередной год и представляются в ФГУЗ "Противочумный центр" Роспотребнадзора и курирующий противочумный институт.

Все материалы должны быть приведены по отдельным очагам или мезоочагам.

Обзор и прогноз эпизоотического состояния природного очага чумы должен содержать введение, в котором кратко описывается территория, обслуживаемая отделениями и эпидотрядами противочумной станции, краткую характеристику эпизоотической ситуации в предшествующем году и описание материалов, послуживших основой для настоящего эпизоотологического обзора.

Материалы по отдельным очагам или их частям излагают в следующем порядке:

- краткая характеристика погодных условий анализируемого периода, их сравнение с нормой;

- описание и оценка кормовой базы носителей чумы;

- характеристика численности и ее динамики в анализируемый период - как основных, так и второстепенных носителей, имеющих значение в эпизоотологии и эпидемиологии чумы; выявление существенных различий в численности на отдельных участках обслуживаемой территории (прилагают карты численности основных носителей);

- характеристика генеративной активности основных и наиболее важных второстепенных носителей чумы как в целом по очагу, так и по отдельным его участкам; если имелись различия, анализ основных показателей и оценка их влияния на динамику численности грызунов;

- характеристика видового состава и численности основных переносчиков возбудителя чумы; описание и анализ изменений обилия блох на основных носителях; сравнение данных анализируемого периода со среднемноголетними значениями; краткое описание хода размножения переносчиков и выявление его отличия от обычного (прилагают карты численности основных переносчиков);

- перечень видового состава и динамики численности носителей и переносчиков возбудителя чумы в населенных пунктах и жилищах человека; описание объема и эффективности поселковой дератизации и дезинсекции;

- характеристика эпизоотического состояния очагов чумы и их отдельных участков в отчетном году, которая включает подробную информацию о количестве точек с положительными результатами на чуму при бактериологическом и серологическом исследовании, числе выделенных культур возбудителя чумы с указанием объектов выделения и сроках их сбора, площадях эпизоотических участков, проценте зараженных проб в пределах эпизоотических участков и плотности таких проб на тысячу га (прилагают карты размещения положительных на чуму проб);

- анализ интенсивности эпизоотического процесса на основании вычисленных показателей, оценка эпидемической опасности сложившейся ситуации на основании изучения дислокации эпизоотических участков, поселений носителей и населенных пунктов, а также сведений о численности синантропных грызунов и блох;

- прогнозирование эпизоотической активности природных очагов чумы и их частей на основании анализа всех материалов эпизоотологического обследования и прогноза численности основных видов носителей и переносчиков на следующий год (сезон);

- оценка реальной возможности эпидемических осложнений и общие рекомендации по организации санитарно-профилактических мероприятий, их возможному объему и срокам.

Обзор подписывают начальник противочумной станции и заведующие лабораториями, принимавшие участие в его составлении.

7.4. Тактические приемы наблюдений за эпизоотическим

состоянием природных очагов чумы Российской Федерации

При выборе тактики эпизоотологического обследования ориентируются на результаты эпидемиологического районирования (Прилож. 4), эпизоотологическую дифференциацию природного очага чумы и фазу эпизоотического цикла, в которой на период обследования находился очаг.

В очагах чумы с непостоянной эпизоотической активностью различают эпизоотические и межэпизоотические периоды, которые продолжаются от одного года до нескольких лет. Наступление межэпизоотического периода констатируют тогда, когда на всей обследуемой территории природного очага отсутствуют регистрации зараженных животных в течение одного года после последней положительной находки. Эпизоотический период определяется с момента первого обнаружения возбудителя в очаге и заканчивается через 1 год с момента последнего обнаружения.

В очагах с постоянной эпизоотической активностью нет оснований выделять межэпизоотический период. Однако периоды сезонных затуханий и обострений процесса должны быть четко определены.

И в тех и в других очагах в обычные для конкретного очага периоды сезонного обострения эпизоотического процесса проводят эпизоотологическое обследование с целью обнаружения эпизоотии, определения ее количественных характеристик и получения информации для обоснованного планирования профилактических мероприятий.

Приемы эпизоотологического обследования природных очагов чумы, закрепленных за противочумными станциями, имеют различия в эпизоотический и межэпизоотический периоды. В межэпизоотический период поиск эпизоотии осуществляют в наиболее перспективных для ее обнаружения местах, используя результаты эпизоотологической дифференциации и оперативных зоологических наблюдений. Особое внимание уделяется обнаружению признаков эпизоотий в поселениях носителей чумы (снижение численности и активности грызунов, повышенная миграция эктопаразитов, смена поведенческих реакций, находки больных и павших зверьков, скопление хищников и т.д.). Точки эпизоотологического обследования закладывают в поселениях носителей по усмотрению зоолога, при этом не требуется соблюдать равномерность их рассредоточения по территории с обязательным посещением каждого сектора. Регламентируемая плотность обследования является лишь средней характеристикой, на которую ориентируются при определении общего числа проб, приходящихся на ту или иную категорию секторов.

При обнаружении возбудителя (эпизоотический период) немедленно приступают к определению размеров и границ эпизоотической территории. Обследование остальной территории продолжают по запланированной схеме. Дополнительно, вокруг точки с положительным результатом на чуму (не более чем в 5 км от нее и, как минимум, в 4-х направлениях), берут пробы полевого материала. Новые точки могут располагаться в любых секторах, в том числе и с очень низким уровнем эпидемической опасности, на которых в другое время сбор полевого материала не предусмотрен. Очередные точки по определению эпизоотической территории располагают на удалении до 10 км от первой. Затем обследование корректируют по мере появления новых положительных результатов. В горных очагах интервалы между точками обследования могут быть уменьшены соответственно размерам ареалов популяций или поселений носителей.

При составлении на сезон территориально-календарного плана из обследования исключают труднодоступные территории с низкой плотностью населения, резко отличающиеся от очаговых территорий, ландшафтные районы, окультуренные земли или другие участки, где отсутствуют поселения носителей. При этом, крупные массивы или отдельные секторы, где поиск эпизоотий чумы перспективен, могут обследоваться с большей интенсивностью.

Обследование проводят в оптимальные для сезонного обострения эпизоотического процесса фенологические сроки. Для каждого подразделения возможны значительные корректировки регламентируемых календарных сроков, включая перегруппировку сил и увеличение продолжительности обследования во время эпизоотии.

Объем пробы зависит прежде всего от численности и активности животных, однако по возможности следует стремиться к добыче максимально допустимого на одной точке количества зверьков (20 - 30 экз.) и норовых блох (40 - 50 экз.), если таковые имеются. Превышать указанный объем проб допускается только при учетных отловах и сборах (рекомендуемые сроки и плотность эпизоотологического обследования различных по уровню эпидемической опасности участков природных очагов чумы приведены в прилож. 3). В зависимости от типа активизации в течение года эпизоотического процесса в конкретном очаге чумы (одновершинный или двухвершинный) в регламенте определено количество обследовательских сезонов (весенний, летний, осенний и т.д.), для каждого из которых выделена отдельная строка с ориентировочным указанием срока и продолжительности обследования. При необходимости сезон может быть разбит на два-три периода, разделенных интервалами произвольной длительности.

Последовательность охвата территории в течение сезона, включая повторное взятие материала в том или ином секторе, определяется территориально-календарным планом или складывающейся эпизоотической обстановкой.

Плотность и объем обследования участков являются усредненными показателями для всех секторов той или иной категории. Дробные значения плотности указывают на то, что одна проба приходится в среднем на два и более сектора. При распределении общего числа планируемых по территории точек эпизоотологического обследования не следует стремиться ни к их равномерности, ни к обязательному посещению каждого сектора. Участки, где наиболее вероятно обнаружение зараженных носителей и переносчиков, могут обследоваться со значительно большей плотностью и кратностью. При необходимости и наличии возможностей объем обследования может быть значительно увеличен.

На территориях (секторах), для которых достаточным является только визуально-рекогносцировочное обследование, сбор полевого материала может осуществляться при определении границ эпизоотических участков или при возникновении на них ситуации, характерной для возможного начала эпизоотического периода.

При проведении эпизоотологического обследования весь поступающий в лабораторию ПЧС полевой материал должен исследоваться дифференцированно. Выбор наиболее экономичных и эффективных тактических и методических лабораторных исследований производят на основе информативности и целесообразности результатов многолетних данных, тесно связанных с характерами сезонной и многолетней эпизоотической активности очагов, сезонными изменениями восприимчивости и инфекционной чувствительности носителей возбудителя чумы.

8. Профилактические мероприятия

8.1. Полевая и поселковая дератизация и дезинсекция

Для предотвращения заражений человека истребление носителей и переносчиков возбудителя чумы осуществляют на энзоотичной территории. Мероприятия, проводимые в период регистрации эпизоотии чумы, расценивают как экстренную профилактику, в межэпизоотический сезон - как заблаговременную. Экстренная профилактика призвана снижать риск заражения людей чумой, заблаговременная - ограничивать интенсивность и экстенсивность прогнозируемого на ближайшее будущее эпизоотического процесса.

Полевую дератизацию и дезинсекцию используют как меру экстренной профилактики. При этом истребляют грызунов и (или) блох в каждой точке обнаружения зараженных животных на площади до 100 га. Обработке подлежат также окрестности всех населенных пунктов, расположенных в зоне эпизоотии и до 10 км за ее пределами. Ширина барьерной обработки вокруг населенных пунктов составляет 0,3 - 0,5 км. Одновременно проводят поселковую дератизацию и дезинсекцию. Кроме экстренной поселковой дератизации и дезинсекции, при повышенных показателях численности синантропных грызунов (более 15% попадания в ловушки) и наличии блох в жилье человека, проводят заблаговременную профилактику.

В зоне эпизоотии на удаленных от населенных пунктов участках интенсивной хозяйственной, изыскательской, промысловой и другой деятельности полевую дератизацию и дезинсекцию проводят на всей площади, где возможен контакт с источниками инфекции. При полевой и поселковой дератизации и дезинсекции применяют методы и нормативы, регламентируемые действующими методическими документами.

8.2. Специфическая профилактика чумы

Показанием к проведению на территории природных очагов чумы вакцинопрофилактики являются эпизоотические или эпидемические проявления. В зависимости от конкретной эпизоотической или эпидемической обстановки вакцинацию проводят на строго определенной территории.

При выявлении на территории природных очагов эпизоотических проявлений чумы различной интенсивности и распространенности или эпидемических (спорадических или групповых) проявлений руководители противочумных учреждений определяют необходимость вакцинопрофилактики всего населения или отдельных групп, подверженных повышенному риску заражения (животноводов, заготовителей фуража и сена, фермеров, охотников, сезонных рабочих, организованных строительных и изыскательских групп, вахтовых смен добывающей и перерабатывающей промышленности и др.). Также они определяют сроки вакцинации с учетом сезонов активизации эпизоотической активности очага, сроков охотопромысла на носителей и других моментов. Решение о проведении вакцинопрофилактики принимает санитарно-противоэпидемическая комиссия.

Вакцинацию населения проводят территориальные учреждения здравоохранения, которые формируют прививочные бригады. Каждую бригаду возглавляет врач, который обучает технике и методике вакцинации средний медицинский персонал бригады и несет ответственность за правильный подбор лиц, подлежащих вакцинации. Противочумные учреждения осуществляют контроль за полнотой охвата вакцинацией населения, качеством и документированием работы.

Ревакцинацию проводят через 12 мес. после первой прививки, в особо тяжелых эпидемических условиях - через 6 мес. Ревакцинация населения отменяется по прекращении эпизоотии, угрожаемых контингентов - спустя один год после прекращения эпизоотии.

Основным методом вакцинации является накожный. Она проводится согласно действующей "Инструкции по применению вакцины чумной живой сухой", которая вкладывается в каждую коробку препарата.

В случае необходимости проведения массовой специфической профилактики населения целесообразно использовать безыгольный инъектор БИ-3М (с противоинфекционным протектором).

В случае необходимости проведения массовой специфической профилактики населения для защиты от легочной чумы с воздушно-капельным механизмом передачи возбудителя целесообразно использовать ингаляционный метод согласно "Инструкции по ингаляционной иммунизации людей против чумы" (Москва, Саратов, 1987).

8.3. Специальная подготовка медицинских, ветеринарных

и немедицинских работников

8.3.1. Противочумные учреждения в пределах обслуживаемой ими территории должны ежегодно, а при выявлении эпизоотических проявлений чумы дополнительно, осуществлять специальную подготовку медицинских работников учреждений здравоохранения и госсанэпиднадзора и работников ветеринарных учреждений независимо от их ведомственной принадлежности.

8.3.2. Подготовку медицинских работников осуществляют через лекции, семинары, инструктажи и тренировочные занятия. На семинарских занятиях и во время инструктажей должны быть подробно изложены: вопросы эпидемиологии (источники инфекции, способы заражения, пути распространения, сбор эпидемиологического анамнеза); проблемы клинической и дифференциальной диагностики кожных, бубонных и легочных форм чумы от аналогичных форм сибирской язвы, туляремии и других инфекционных и неинфекционных заболеваний; меры личной профилактики и проведение первичных противоэпидемических мероприятий при выявлении больных с подозрением на чуму. Семинарами и инструктажами должны быть охвачены все врачи и средние медицинские работники лечебно-профилактических и санитарно-эпидемиологических учреждений независимо от их ведомственной принадлежности и специальности.

8.3.3. Тренировочные занятия с вводом условно больного чумой должны проводиться непосредственно в медицинских учреждениях, в которые обращаются больные люди (поликлиниках, больницах, фельдшерско-акушерских, фельдшерских пунктах и др.). Тренировочные занятия должны быть направлены на практическую реализацию теоретической подготовки в проведении первичных противоэпидемических мероприятий: от обнаружения условно больного до госпитализации в предусмотренный для этих целей специализированный госпиталь (бокс). Такие занятия предусматривают практическое освоение всеми медицинскими работниками, закрепленными за отдельными формированиями (госпиталь, провизорный госпиталь, изолятор, бактериологическая лаборатория), своих функциональных обязанностей, которые предусмотрены оперативными планами противоэпидемических мероприятий на случай возможного возникновения заболеваний чумой и другими конвенционными инфекционными болезнями.

Контроль практической готовности персонала лечебно-профилактического учреждения к проведению первичных мероприятий в случае выявления больного (трупа) чумой осуществляется путем проведения внепланового тренировочного учения с вводом условного больного.

8.3.4. Противочумные учреждения, осуществляющие эпиднадзор в природных очагах чумы, на территории которых содержатся верблюды, должны проводить подготовку всех ветеринарных работников независимо от должности по вопросам эпизоотологии, клиники, диагностики и профилактики чумы у верблюдов. Подготовку ветеринарных работников осуществляют с помощью семинаров и инструктажей, на которых необходимо подробно изложить материал о границах энзоотичной территории чумы в пределах административных территорий (район, область), о носителях и переносчиках чумного микроба, о механизме заражения верблюдов, клинической картине заболевания и патолого-анатомических изменениях в органах и тканях заболевших чумой животных. Надо обратить особое внимание слушателей на необходимость вызова сотрудников противочумных учреждений в случае обнаружения верблюдов с подозрением на чуму или больных животных с неясным диагнозом. При этом следует заострить внимание на безусловную обязательность вскрытия ветеринарными работниками трупов павших или забитых верблюдов, объяснить слушателям причину присутствия при вскрытии специалистов противочумного учреждения, цели взятия материала на лабораторное исследование, а также возможные последствия нарушения описанных правил.

8.3.5. Противочумные и санитарно-эпидемиологические учреждения должны провести информационно-разъяснительную работу в форме лекций, бесед и инструктажей по эпидемиологии, клинике и основам личной и общественной профилактики чумы среди сотрудников таможен, пограничников, летного состава гражданской авиации, сотрудников ГИБДД и т.д.

8.4. Информационно-разъяснительная работа среди населения

Информационно-разъяснительная работа должна быть направлена на личную и общественную безопасность населения. С этой целью среди населения энзоотичной территории необходимо формировать сознательное отношение к предупреждению возникновения и распространения заболеваний чумой, которое может быть обеспечено обязательным и своевременным обращением всех граждан с признаками заболевания, похожего на чуму, в медицинские учреждения.