ПРАВИЛА 3 page

7.4.6. Обеззараживание загрязненных выделениями и биологическими жидкостями (кровь, рвотные массы, фекалии, моча) изделий из текстильных материалов (нательное, постельное белье, полотенца и др.) осуществляют путем замачивания в растворе дезинфицирующего средства.

7.4.7. Дезинфекцию выделений, крови, мокроты, рвотных масс, фекалий, мочи и другого проводят хлорактивными (хлорная известь, гипохлорит кальция и т.д.) и другими дезинфицирующими средствами, разрешенными для применения с этими целями.

7.4.8. Постельные принадлежности (одеяла, матрацы, подушки), одежда, обувь подлежат камерной обработке после выписки больного. Вещи, не подлежащие обработке в камере, следует замачивать в растворе дезинфицирующего средства. При наличии на матрацах и подушках чехлов из влагонепроницаемых материалов, их обеззараживают раствором дезинфицирующего средства способом протирания. Допускается дезинфицировать обувь из резины и пластика погружением в разрешенные для этого растворы дезинфицирующих средств.

7.4.9. При текущей дезинфекции в палатах проводят обеззараживание поверхностей (пол, стены, двери и др.), предметов оборудования (включая санитарно-техническое) с применением дезинфицирующих или моюще-дезинфицирующих средств способом протирания. Заключительную дезинфекцию (после выписки пациента) проводят способом орошения.

7.4.10. Обеззараживание медицинских отходов классов Б и В (комплекты однократного использования, перевязочный материал, ватно-марлевые повязки, тампоны, белье, маски, спецодежда, салфетки, изделия медицинского назначения однократного применения и др.) перед утилизацией осуществляют в местах их образования в соответствии с СанПиН 2.1.7.728-99 "Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений". Для дезинфекции медицинских отходов применяют химический (способом погружения в растворы дезинфицирующего средства) или физический метод обеззараживания по режимам, обеспечивающим гибель вирусов.

7.4.11. Применяемые при КГЛ дезинфицирующие средства должны обладать вирулицидной активностью в отношении устойчивых к дезинфектантам вирусов (с указанием на то, что они тестированы на вирусе полиомиелита).

7.4.12. За медицинским персоналом устанавливается медицинское наблюдение с ежедневным термометрированием.

7.4.13. При наличии анамнеза, клинических данных и результатов лабораторных исследований, подтверждающих КГЛ, труп с учетом высокого риска заражения персонала вскрытию не подлежит.

7.4.14. При наличии анамнестических и клинических признаков КГЛ без подтверждения диагноза лабораторными исследованиями труп подлежит патолого-анатомическому вскрытию с применением средств индивидуальной защиты (противочумный костюм I типа) и мер личной безопасности в соответствии с требованиями МУ 3.4.1028-01 "Организация и проведение первичных мероприятий в случаях выявления больного (трупа), подозрительного на заболевание карантинными инфекциями, контагиозными вирусными геморрагическими лихорадками, малярией и инфекционными болезнями неясной этиологии, имеющими международное значение" под наблюдением специалиста противочумного учреждения или специалиста по особо опасным инфекциям управления Роспотребнадзора по субъекту Российской Федерации. При этом требованиям биологической безопасности отвечает метод вскрытия in situ (на месте) без извлечения органов из полостей трупа. В этом случае инфицированная кровь, содержимое органов и полостей стекают в грудную и брюшную полости трупа, уменьшая возможность загрязнения окружающих предметов и персонала.

7.4.15. Перевозка трупа и его захоронение осуществляются в соответствии с требованиями вышеуказанных методических указаний в присутствии специалиста противочумного учреждения или специалиста по особо опасным инфекциям управления Роспотребнадзора по субъекту Российской Федерации.

8. Лабораторная диагностика КГЛ у людей

Лабораторную диагностику КГЛ проводят центры гигиены и эпидемиологии, противочумные учреждения, имеющие разрешение на работу с вирусами II группы патогенности.

8.1. Отбор и транспортирование проб материала

от больных людей (трупов)

8.1.1. Отбор проб материала от людей (трупов), а также подозрительных больных осуществляется в соответствии с требованиями СП 1.3.1285-03 "Безопасность работы с микроорганизмами I - II групп патогенности (опасности)" и СП 1.2.036-95 "Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I - IV групп патогенности" медицинским персоналом с соблюдением требований противоэпидемического режима (во избежание внутрибольничного заражения). Необходимо использование защитного костюма II типа, дополненного очками, а при вскрытии трупа - костюма I типа, дополненного фартуком, второй парой резиновых перчаток и нарукавниками.

Кровь, взятая у больных в острой стадии заболевания, может содержать вирус в высоких концентрациях, что диктует необходимость дезинфекции пробирок, шприцев, игл и другого лабораторного оборудования немедленно после применения. Использованные шприцы, пробирки, стеклянные палочки, пипетки погружают в раствор дезинфицирующего средства.

Запрещается проводить следующие манипуляции:

- центрифугирование;

- встряхивание;

- пипетирование ртом.

8.1.2. Забор проб материала для лабораторного исследования.

Взятие проб крови в остром периоде заболевания должно производиться однократно.

8.1.2.1. Забор проб для вирусологических исследований

Материалом для выделения вируса ККГЛ является:

- цельная кровь;

- плазма;

- сгусток крови;

- секционный материал (печень, легкие, селезенка, почки, головной мозг).

Материал для вирусологических исследований забирают в ранние сроки от начала заболевания (до 7 дня), то есть в период вирусемии. Эффективность выделения вируса в этот период очень высока и приближается к 100%. При нормализации температуры тела возможность выделения вируса резко снижается, а при появлении в крови вирусспецифических иммуноглобулинов класса G (10 - 14 день от начала болезни) становится невозможной.

Кровь берут, соблюдая правила асептики, из локтевой вены в количестве 5 мл в острый период болезни (первые 5 - 7 сут.) и переносят в пластиковую пробирку с плотно закрывающейся (завинчивающейся) пробкой. Пробирка этикетируется. Этикетка делается из лейкопластыря и наклеивается на пробирку. На этикетке указываются фамилия, имя, отчество больного, вид материала, дата взятия.

Забор секционного материала при вскрытии умерших от КГЛ, а также подозрительных на данную инфекцию, проводит патологоанатом или судмедэксперт в присутствии специалиста по особо опасным инфекциям.

Из внутренних органов (сердце, печень, легкие, селезенка, почки, головной мозг) стерильно вырезают кусочек ткани размерами 2 - 3 см. Стерильным шприцем с длинной иглой или стерильной пастеровской пипеткой с резиновой грушей забирают 8 - 10 мл крови из сердца, предварительно обеззаразив участок с помощью раскаленного скальпеля. Следует забирать материал из нескольких участков, подвергшихся изменениям, и из участка рядом расположенной ткани, которая выглядит неизмененной. При наличии распада ткани основное внимание обращают на пограничную зону. Забор секционного материала необходимо производить как можно быстрее после смерти больного (не позднее 20 ч при комнатной температуре). Забранный материал помещают в стерильные пластиковые пробирки с плотно закрывающимися (завинчивающимися) пробками, этикетируют.

Для вирусологического исследования консерванты не добавляют и инактивацию материала не проводят.

Каждая проба сопровождается направлением (Прилож. 6, 7).

Если материал для вирусологических исследований может быть доставлен в лабораторию в течение 2 - 4 ч, то его транспортируют в термосе со льдом. Если время доставки материала превышает 4 ч, его замораживают и доставляют в лабораторию в сосудах Дьюара с жидким азотом или в термоконтейнерах с сухим льдом. Цельную кровь замораживанию не подвергают. Необходимо отделить сыворотку крови от сгустка.

8.1.2.2. Забор проб

для молекулярно-генетического исследования

Забор материала осуществляют в соответствии с Методическими указаниями "Организация работы при исследованиях методом ПЦР материала, инфицированного микроорганизмами I - II групп патогенности" (М., 2003) и Методическими рекомендациями "Забор, транспортировка, хранение клинического материала для ПЦР-диагностики" (М., 2006). Материалом для исследования служат образцы сыворотки и плазмы крови.

Материал для исследования методом ПЦР должен быть взят в первые дни болезни (до 5 - 7 дня), когда вирус циркулирует в крови.

Взятие крови проводят натощак из локтевой вены одноразовой иглой (диаметром 0,8 - 1,1 мм) в одноразовый шприц объемом 5 мл или в специальную вакуумную систему типа "Venojekt", "Vakuett(R)" без антикоагулянта. Взятая шприцем кровь аккуратно (без образования пены) переносится в одноразовую пластиковую пробирку.

Сыворотку крови получают, как указано в п. 9.2.3. Переносят сыворотку отдельными наконечниками с аэрозольным барьером в стерильные одноразовые пробирки объемом 1,5 мл с завинчивающейся крышкой.

Хранят сыворотку крови при температуре от 2 до 8 °С не более 3 сут. при температуре не выше -16 °С - в течение одного месяца, при температуре не выше -68 °С - в течение одного года. Допускается только однократное замораживание-оттаивание материала. При замораживании клинического материала его транспортирование должно проводиться также в замороженном состоянии.

8.1.2.3. Забор проб для серологической диагностики

Объектом исследования является кровь больного.

Кровь отбирают дважды - на 5 - 7 и на 10 - 14 дни от начала заболевания.

Кровь у больного берут из локтевой вены в стерильную пробирку в количестве 5 - 10 мл, соблюдая правила асептики. Для предотвращения гемолиза сыворотку следует отделить от сгустка. Для этого пробирку с кровью помещают в термостат при температуре 37 °С на один час в скошенном положении, затем образовавшийся сгусток крови обводят стеклянной палочкой и помещают в вертикальном положении в холодильник при температуре 2 - 8 °С на 2 - 3 часа. Полученную сыворотку отбирают пипеткой с резиновой грушей или автоматическим дозатором со стерильным наконечником в пластиковую пробирку, герметично закрывают и направляют в лабораторию для исследования на наличие специфических антител к вирусу ККГЛ. Сгусток сохраняется в пробирке только при первом взятии и может быть использован для вирусологического исследования.

Каждая проба сопровождается направлением (Прилож. 8).

8.1.3. Транспортирование крови, сывороток и секционного материала в вирусологическую лабораторию.

Для передачи в вирусологическую лабораторию пробы в первичной герметично закрывающейся таре помещают во вторичную тару, представляющую собой герметичный металлический или пластиковый пенал.

Транспортировать материал для вирусологического исследования следует в жидком азоте (сосуд Дьюара). При его отсутствии можно использовать термос с сухим льдом или термоконтейнер с хладоагентами, где создана отрицательная температура. Биологический материал от больных (трупа) с подозрением на КГЛ отправляют в вирусологическую лабораторию в течение 24 ч.

Материал с направлением доставляется в специализированную лабораторию (в соответствии со схемой доставки материала). Транспортирование материала осуществляется специально выделенным транспортом в сопровождении медицинского работника.

8.2. Подготовка сывороток крови

для серологического исследования

Серологические исследования на обнаружение антигена или определение антител к вирусам II группы патогенности в связи с отсутствием регламентированных методов инактивации вирусов проводят только в боксированном помещении или в боксе биологической безопасности (СП 1.3.1285-03, п. п. 2.1.6 и 2.8.21).

Работу с поступившими сыворотками крови проводят в блоке для работы с инфицированными животными в противочумном костюме I типа или в боксе биологической безопасности II класса в костюме IV типа, дополненном резиновыми перчатками, или в боксе биологической безопасности III класса в костюме IV типа (СП 1.3.1285-03, прилож. 4).

Вскрывают бикс, проверяют правильность оформления направления, целостность и герметичность пробирок.

Свежие образцы сывороток крови хранят при температуре от 2 до 8 °С в течение одной недели при условии отсутствия микробной контаминации. Длительное хранение образцов проводят при температуре -20 °С и ниже. Образцы могут подвергаться замораживанию-оттаиванию только однократно. После размораживания образец следует тщательно перемешать. Не следует использовать для исследования сыворотки крови с выраженной гиперлипидемией.

8.3. Методы специфической лабораторной

диагностики материала от больных (трупов)

8.3.1. Выявление РНК вируса ККГЛ методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) проводят классическим методом с электрофоретическим учетом результата реакции в агарозном геле или в режиме реального времени.

РНК из проб материала выделяют с помощью коммерческих наборов для выделения РНК/ДНК в строгом соответствии с прилагаемой инструкцией. Работу проводят согласно требованиям противоэпидемического режима, используя одноразовую пластиковую посуду в боксах II - III классов биологической безопасности. ОТ-ПЦР осуществляют с помощью сертифицированных тест-систем в соответствии с прилагаемыми инструкциями, полученные амплификаты (при использовании классического варианта ОТ-ПЦР) анализируют электрофоретически.

Использование ПЦР-диагностики позволяет не только определить РНК вируса ККГЛ в крови, но и установить уровень (при гибридизационно-флуоресцентном методе учета результатов, используя контрольную панель проб с точно определенной концентрацией вируса) и продолжительность виремии, а также оценить эффективность противовирусной терапии. РНК вируса ККГЛ обнаруживается в крови больных с 1 по 7 сут. заболевания, но в ряде случаев может выявляться до 14 сут. от начала болезни.

Результаты исследования оформляются в соответствии с Прилож. 9.

8.3.2. Целью серологического исследования являются ранняя диагностика КГЛ с выявлением вирусного антигена и специфических антител класса M (IgM) и подтверждение диагноза при нарастании уровня антител класса G (IgG) в парных сыворотках крови. При этом используются сертифицированные иммуноферментные тест-системы (ЗАО "Вектор-Бест", г. Кольцово Новосибирской обл. и ЗАО Биотехнологическая компания "Биосервис", г. Боровск Калужской обл.).

Результаты исследования оформляют в соответствии с Прилож. 10.

8.3.3. Выделение вируса ККГЛ осуществляется в специализированных вирусологических лабораториях, имеющих разрешение на работу с вирусами II группы патогенности. Для выделения вируса используют биопробных животных - 1 - 2-дневных сосунков белых мышей или клеточные линии Vero-E6, SW-13 и др.

8.4. Оценка результатов специфической лабораторной

диагностики КГЛ

8.4.1. Выявление РНК и/или антигена вируса ККГЛ в исследуемых образцах, взятых на ранних сроках заболевания (до 5 - 7 дня), свидетельствует об инфицированности больных и в совокупности с данными эпидемиологического анамнеза, клинической картины и результатами клинической лабораторной диагностики может считаться основанием для постановки диагноза "КГЛ".

8.4.2. IgM появляются на 5 - 7 день от начала заболевания, максимальные титры (1:20000 и более) выявляются на 2 - 3 нед., а к 90 сут. IgM, как правило, обнаруживаются в невысоких титрах или не определяются совсем.

Специфические IgG появляются на 7 - 10 день от начала заболевания, достигают пика к концу второго месяца, держатся в высоких титрах 6 - 8 мес. К концу первого года титр IgG снижается, и невысокие титры у некоторых больных сохраняются годами. У части больных к концу первого года IgG полностью исчезают из периферической крови. При исследовании парных сывороток на наличие IgG для постановки диагноза необходимо четырехкратное и большее нарастание титра антител.

При обнаружении IgM в титре 1:800 и более и IgG в любом титре диагноз "КГЛ" считается подтвержденным.

9. Профилактика КГЛ

9.1. Эпизоотологическое и эпидемиологическое районирование

территории природного очага КГЛ (общие принципы)

9.1.1. Эпизоотологическое и эпидемиологическое районирование территории природного очага КГЛ является основой планирования и проведения профилактических мероприятий и включает:

- определение границ природного очага;

- определение пространственной структуры природного очага;

- изучение биоценотической структуры природного очага;

- описание природно-климатических особенностей природного очага;

- выяснение количественных и качественных характеристик интенсивности контакта населения с носителями и переносчиками возбудителя КГЛ;

- дифференциацию природных очагов КГЛ на отдельные участки по степени опасности заражения человека.

9.1.2. В качестве исходных материалов для проведения эпизоотологического районирования используют природно-климатическую характеристику природного очага (средняя температура в январе и июле, среднегодовое количество осадков), видовой состав, численность мелких млекопитающих и птиц, места их обитания, видовой состав иксодовых клещей, их стациальное размещение и численность, результаты исследования клещей на вирусоносительство; индексы обилия и встречаемости клещей на крупном и мелком рогатом скоте, птицах и мелких млекопитающих.

9.1.3. По степени эпизоотической опасности территорию природного очага делят на отдельные участки: реально опасные, условно опасные и безопасные. При этом используют следующие критерии:

- к "реально опасным" относятся участки природного очага, где установлена циркуляция вируса, и к началу эпидемиологического сезона индекс обилия имаго H.marginatum - резервуара и переносчика вируса ККГЛ - составляет три и выше экземпляров на одну голову крупного рогатого скота;

- к "условно опасным" участкам природного очага относится весь ареал иксодовых клещей, в первую очередь H.marginatum;

- "безопасные" территории характеризуются отсутствием клещей H.marginatum.

9.1.4. При эпидемиологическом районировании природного очага КГЛ выясняют современный род занятий и хозяйственной деятельности населения, численность постоянного и временного населения в природном очаге, наличие и мощность лечебных и санитарно-профилактических учреждений, их укомплектованность специалистами, определяют территориальную приуроченность мест инфицирования человека, выясняют пути передачи инфекции, условия и причины, способствовавшие заражению человека (проведение сельскохозяйственных работ, уход за сельскохозяйственными и домашними животными, пребывание в природных биотопах), время (сезон) инфицирования, характер эпидемических проявлений инфекции в прошлом (вспышки, групповые заболевания, спорадические случаи).

9.1.5. Дифференциацию энзоотичной по КГЛ территории проводят с использованием различных карт природного очага, составленных на топографической основе в масштабе 1:100000 (п. п. 6.2.5 - 6.2.7). На карты наносят данные о территориальной приуроченности эпидемических проявлений КГЛ в прошлом, указывают дислокацию отдельных населенных пунктов, животноводческих ферм, мест отдыха населения (лагеря, туристические стоянки и т.д.). Обозначают участки территории, относящиеся к различным сельскохозяйственным учреждениям, скотопрогонные трассы, территории, отведенные под дачные участки, места заготовки сена, лесополосы, дороги, места расположения учреждений здравоохранения, ветеринарной службы, показатели плотности и размещения населения.

9.1.6. Сравнивая показатели социальных факторов с данными, характеризующими эпизоотологическое состояние административных районов, выявляют районы с разной степенью эпидемической опасности для проживающего там населения или прибывающих контингентов.

9.2. Акарицидные мероприятия и индивидуальная

защита населения

9.2.1. Борьба с клещами H.marginatum

9.2.1.1. Борьба с клещами-переносчиками носит комплексный характер и охватывает весь жизненный цикл клеща. Она включает меры экологического, хозяйственного и химического воздействий на популяцию клещей на всех фазах его развития. Мероприятия по уничтожению клещей проводят в соответствии с общими требованиями к проведению дезинсекционных мероприятий.

9.2.1.2. Задача противоклещевых мероприятий - снизить уровень численности популяции клеща H.marginatum ниже порога эпидемической опасности (средний индекс обилия клещей на животных не должен превышать 0,5 - 2,0 особей), т.к. уничтожить популяцию клеща, имеющую многочисленных прокормителей, в т.ч. и в дикой фауне, невозможно.

9.2.1.3. В создании неблагоприятных условий для обитания иксодовых клещей в природных биотопах важным моментом является коренное улучшение сельскохозяйственных угодий посредством распашки, окультуривания выпасов, пастбищ, т.е. трансформация естественных или несельскохозяйственных угодий в пашни, культурные сенокосы и пастбища посредством комплекса агротехнических мероприятий. Данные мероприятия будут способствовать значительному снижению численности клещей - переносчиков возбудителя КГЛ.

9.2.1.4. Необходимо проводить регулируемый выпас скота, осуществляя ротацию пастбищ, т.к. значительно экономически выгоднее и гораздо безопаснее перевести скот на чистое пастбище, чем возвращать его на зараженное.

9.2.1.5. Уничтожение клещей в природных биотопах проводят в течение эпидемического сезона в неблагополучных по КГЛ районах. При этом должны использоваться акарицидные (инсектоакарицидные) средства, разрешенные для применения в качестве дезинфекционного средства, предназначенного для борьбы с иксодовыми клещами в природных биотопах. Применение акарицидных средств осуществляется в соответствии с действующими методическими документами (инструкциями по применению), где приведены общая характеристика средства, его назначение и область применения, характеристика активности и безопасности, правила обработки территории, норма расхода средства и расчет его количества для приготовления рабочих растворов (эмульсий или суспензий), противопоказания для работы со средством, меры предосторожности и первая помощь при отравлении, указания по хранению и транспортированию средства, его обезвреживанию и удалению. Норма расхода таких средств для борьбы с H.marginatum должна быть увеличена в 2,5 - 3 раза по сравнению с рекомендуемой для клещей рода Ixodes.

9.2.1.6. Предварительно перед обработкой территории проводят обязательное энтомологическое (акарологическое) обследование местности для изучения видового состава и численности иксодовых клещей и рекомендуют акарицидные препараты с оптимальной концентрацией и дозой для обработки территории. Акарицидные обработки проводят за 3 - 7 дней до заезда детей и подростков в летние оздоровительные организации. При появлении клещей на обработанной территории обработку необходимо повторить, но не более трех раз за сезон.

9.2.1.7. Перед открытием летних оздоровительных организаций загородного типа для детей и подростков рекомендуется участки, наиболее часто посещаемые людьми, механически освобождать от завалов и лесной растительности. Эту территорию необходимо оградить от проникновения домашних и диких животных, которые могут занести клещей. Особое внимание должно уделяться парковым дорожкам, детским площадкам и другим местам массового скопления людей, где травяная растительность должна быть скошена. Участки, на которых встречаются клещи, должны быть обработаны акарицидами. Кроме того, необходимо обработать не менее чем на 100 м территорию вокруг защищаемого объекта (барьерные обработки территории).

9.2.1.8. Уничтожение врановых и их колоний в лесополосах, расположенных в непосредственной близости от населенных пунктов, проводят всеми доступными экологически оправданными способами (разорение гнезд, применение биоакустических репеллентов, смывание птиц струей воды из брандспойта пожарной машины, устранение стихийных свалок с пищевыми отходами вдоль лесополос и т.д.), включая обработку пестицидами местности под грачевниками и прилегающей территории. Данные мероприятия будут способствовать снижению численности клещей на сельскохозяйственных животных весной следующего года.

9.2.1.9. Наиболее доступной и эффективной мерой является уничтожение клещей на сельскохозяйственных животных. Эта часть работы выполняется ветеринарной службой. Клещей на животных уничтожают акарицидными средствами, разрешенными для применения с этой целью в ветеринарии. Тактика борьбы с клещами на животных строится с учетом жизненного цикла эктопаразитов, погодных условий и экологической безопасности применяемых акарицидов.

9.2.1.10. Методы и способы аппликации пестицидов на животных следующие:

- крупный рогатый скот купают в ваннах, опрыскивают или обтирают акарицидными жидкостями;

- лошадей обрабатывают индивидуально, в зависимости от места прикрепления клещей, опрыскиванием или обтиранием акарицидами;

- овец либо купают в проходной ванне, либо используют метод локальной обработки мест прикрепления клещей (т.н. забанивание);

- домашних птиц (кур, гусей, индеек) либо купают путем многократного кратковременного погружения головы и шеи в раствор акарицида, либо голову и шею обильно обтирают растительным маслом.

Примерный перечень средств борьбы с клещами H.marginatum на животных представлен в Прилож. 11.

9.2.1.12. Ответственность за безопасность при проведении работ по дезинсекции возлагается на администрацию организации и физические лица, занимающихся дезинсекционной деятельностью.

9.2.1.13. Одновременно с прямым истреблением клещей на животных и на местности в хозяйствах, расположенных на территориях энзоотичных по КГЛ, необходимо проводить широкомасштабную разъяснительную работу среди населения всеми доступными методами через СМИ, листовки, плакаты, инструктажи среди групп риска и особенно с владельцами частного скота к началу сезона и в течение всего эпидемического периода.

9.2.1.14. Все профилактические противоклещевые мероприятия на территории муниципальных образований координируют главы администраций (проводят заседания СПК муниципальных образований, заслушивают отчеты о проведенных профилактических мероприятиях исполнителей районных организаций, контролируют выделение и использование финансовых средств).

9.2.2. Индивидуальная защита населения от нападения

иксодовых клещей в природных биотопах

9.2.2.1. Случаи нападения на людей клещей H.marginatum связаны, в основном, с производственной деятельностью в животноводстве, полеводстве. Опасности нападения этих клещей особенно подвержены пастухи, скотники, полеводы во время выпаса животных на целинных пастбищах, в лесополосах или во время полевых работ и сенокоса. Иксодовые клещи других родов часто нападают на людей во время отдыха на природе, прогулок и т.д.

9.2.2.2. При посещении природных биотопов, в которых могут обитать клещи, люди должны соблюдать правила поведения, которые помогут им избежать присасывания клещей к телу (Прилож. 12).

9.2.2.3. Риск присасывания клещей можно значительно снизить, используя специальную одежду для защиты от клещей и аэрозольные инсектоакарицидные средства для обработки одежды, предназначенные для защиты людей от нападения иксодовых клещей - переносчиков КГЛ. Репеллентные средства не эффективны для защиты от нападения клещей H.marginatum.

9.2.2.4. Применять химические средства необходимо в соответствии с утвержденным текстом этикетки. Нарушение правил поведения на территории природных очагов и способа применения средства может привести к присасыванию клещей.

9.2.2.5. Список рекомендуемых к применению населением средств для защиты от нападения клещей-переносчиков указывается в ходе проведения санитарно-разъяснительной работы.

9.2.2.6. При обнаружении клеща на теле следует немедленно его снять, используя пинцет, или руками в резиновых перчатках. Снятого клеща следует поместить в стеклянный флакон (банку) с крышкой. При первой возможности необходимо обратиться в лечебно-профилактическую организацию и передать сосуд со снятым клещом. Категорически запрещается снимать и давить клещей руками с повреждением кожных покровов.

9.3. Специальная подготовка медицинских и других работников

на энзоотичной по КГЛ территории

9.3.1. На энзоотичных по КГЛ территориях осуществляют специальную подготовку медицинских работников, органов и организаций здравоохранения, Управлений Роспотребнадзора и центров гигиены и эпидемиологии в субъектах Российской Федерации.

Подготовку проводят на семинарах, при проведении инструктажей и на тренировочных занятиях. На семинарах и во время инструктажей должны быть подробно изложены вопросы эпидемиологии, клинической и дифференциальной диагностики КГЛ, проведения первичных противоэпидемических мероприятий при выявлении больного с подозрением на КГЛ и меры личной безопасности. При этом особое внимание обращают на принципы ведения больных, отбора, хранения и транспортирования материала от больных с подозрением на КГЛ.

Тренировочные занятия с вводом условного больного проводят в медицинских организациях, куда непосредственно обращаются больные люди (поликлиники, больницы, фельдшерско-акушерские и фельдшерские пункты и др.). Они должны быть направлены на практическую реализацию теоретической подготовки медицинских работников при проведении первичных противоэпидемических мероприятий от изоляции условного больного по месту его выявления до госпитализации в предусмотренный для этих целей стационар.