Выдача ответов и администрирование

Результаты микроскопического исследования следует передавать в медицинское учреждение или непосредственно врачу, направившему материал на исследование.

Результаты бактериоскопии следует отсылать как можно быстрее — желательно в течение 24 часов с момента получения проб мокроты.

Необходимо еженедельно и ежемесячно обобщать полученные данные для ведения статистики исследований.

Приложение №1

к Инструкции по унифицированным методам

микроскопических исследований

для выявления кислотоустойчивых

микобактерий в клинико-диагностических

лабораториях лечебно-профилактических

учреждений

РЕКОМЕНДУЕМЫЙ СПИСОК ОБОРУДОВАНИЯ И РЕАКТИВОВ ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

1. Основное оборудование:

• микроскоп бинокулярный световой ГОСТ 15150-69;

• микроскоп люминесцентный ГОСТ 15150-69;

• спиртовка со стеклянным колпачком или горелка Бунзена;

• баллон с бутаном;

• облучатель бактерицидный потолочный;

• аквадистиллятор;

• стерилизатор паровой вертикальный для обеззараживания
патологического материала и изделий медицинского назначения с
объемом камеры 30 - 75 л - ТУ 9451-080-12517820-96;

• вытяжной шкаф лабораторный;

• весы для химических реактивов с точностью до 0,01 г - ГОСТ
24104-80;

2. Дополнительное оборудование и расходные материалы:

• капельница для нанесения иммерсионного масла на препарат;

• петля бактериологическая нихромовая с петледержателем;

• подставка («рельсы») для фиксации и окраски мазков;

• лотки (подносы) для сушки неокрашенных мазков;

• штативы для сушки мазков в вертикальном или наклонном
положении;

• емкость с отмытым речным песком и 70° спиртом для очистки
бактериологических петель;

• коробки для хранения стекол, картонные или металлические,
на 12 - 25 стекол;

• таймер на 0 - 60 минут;

• пинцеты анатомические или щипцы для взятия предметных
стекол;

• ножницы из нержавеющей стали;

• градуированные цилиндры;

• фарфоровые ступки с пестиками;

• колбы разной емкости;

• пипетки на 1,2, 5, 10 мл;

• темные флаконы стеклянные или пластиковые для хранения
красителей;

• флаконы с капельными дозирующими трубками для нанесения
красителей на препарат;

• флаконы для сбора проб диагностического материала;

• контейнеры (транспортировочные ящики) для
транспортировки проб;

• планшеты для транспортировки мазков;

• чашки Петри одноразовые пластиковые диаметром 90 мм;

• предметные (оптические препаративные) стекла 25 мм х 75
мм, толщиной 1,1-1,3 мм-ГОСТ 9284-75;

• масло иммерсионное - ГОСТ 13739-78 — с показателем
преломления =1,515;

• штативы для предметных стекол, на 12 - 25 стекол;

• контейнер для отработанных заразных материалов;

• контейнер пластмассовый для бумажного мусора;

• вата белая гигроскопическая или марлевые салфетки;

• одноразовые перчатки;

• лабораторные халаты;

• маски;

• бумажные полотенца, одноразовые;

• ручки, шариковые, с красными чернилами;

• ручки, шариковые, с черными или синими чернилами;

• восковой карандаш или несмываемый маркер;

• фильтровальная бумага № 1;

• ткань для протирания линз;

• бланки направления на микроскопическое исследование;

• лабораторный журнал;

• лабораторные бланки для ответов.

3. Реактивы:

3.1.Растворители, кислоты:

• спирт этиловый 96° марки ОП-2;

• кислота соляная концентрированная - ГОСТ 3118 - 77;

• кислота серная концентрированная - ГОСТ 4204 - 77;

• вода дистиллированная - ГОСТ 6709-72;

• ксилол - ГОСТ 25828-83;

• бумага индикаторная универсальная - ТУ 6 - 09 - 1181 - 76;

3.2. Соли, красители:

• фуксин основной ТУ 6-093804-74;

• фенол кристаллический (карболовая кислота) — ГОСТ 6417-72;

• метиленовый синий хлорид - ТУ 6-09945-75;

• глицерин - чда - ГОСТ 6259-75;

• аурамин ОО (аурамин О, Sigma);

• родамин С - ТУ 6-09-2463-77;

• акридиновый оранжевый C.I. 46005;

• перманганат калия-ГОСТ 10163-76.

3.3. Растворы дезинфицирующих средств:

• 5% раствор хлорамина или

• 5% раствор фенола или

• 5% раствор гипохлорита.

Приложение № 2

к Инструкции по унифицированным методам

микроскопических исследований

для выявления кислотоустойчивых

микобактерий в клинико-диагностических

лабораториях лечебно-профилактических

учреждений

Приложение № 3

к Инструкции по унифицированным методам

микроскопических исследований

для выявления кислотоустойчивых

микобактерий в клинико-диагностических

лабораториях лечебно-профилактических

учреждений

Сопроводительный лист при транспортировке диагностического материала в микроскопическую лабораторию

(заполняется в 2-х экземплярах)

Учреждение отправитель___________________________________

Адрес_________________________________ тел:______________

Учреждение получатель
Адрес_______________

Итого:

Подпись ответственного лица:

Дата и время отправления материала: __________

Материал сдал:________________ Материал принял:

Дата и время получения материала

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО НАСТРОЙКЕ И ЭКСПЛУАТАЦИИ МИКРОСКОПА ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ В ПРОХОДЯЩЕМ СВЕТЕ

Новое поколение отечественных и зарубежных микроскопов оснащено самоцентрирующимися галогенными лампами, и настройка (фокусировка) нити лампы в апертурной диафрагме конденсора производится на заводе-изготовителе. Это существенно облегчает настройку освещения микроскопа по Кёлеру, которая в этих марках микроскопов сводится к ряду приемов, позволяющих совместить оптическую ось изображения и ось подсветки.

Перед началом работы необходимо убедиться, что электрическое напряжение в лаборатории соответствует допустимому при работе с микроскопом. В случае необходимости воспользоваться стабилизатором напряжения.

Осмотреть, нет ли в микроскопе поврежденных или сломанных деталей.

Включить освещение микроскопа, отрегулировав его на малое напряжение, которое используется при работе с малым увеличением.

Проверить правильность регулировки и фокусировку (направленность) источника света.

Убедиться, что конденсор с открытой диафрагмой занимает верхнее положение, а матовое стекло отсутствует в тракте подсветки (под конденсором);

Настройку освещения микроскопов рекомендуется производить следующим образом.

Установить в ход лучей объектив 40х и сфокусировать его на резкое изображение поверхности препарата.

Установить препарат таким образом, чтобы в поле зрения микроскопа попал наиболее прозрачный участок.

Вращая кольцо полевой диафрагмы, расположенное на основании микроскопа, закрыть полевую диафрагму.

С помощью расположенной на конденсоре специальной рукоятки закрыть апертурную диафрагму.

Перемещая конденсор путем вращения винта вертикального перемещения конденсора, добиться резкого изображения краев прикрытой полевой диафрагмы в поле зрения микроскопа.

С помощью расположенных сбоку от конденсора его центровочных винтов добиться перемещения изображения краев прикрытой диафрагмы в центр поля зрения.

Вращая кольцо полевой диафрагмы, раскрыть ее до размеров поля зрения.

С помощью рукоятки конденсора раскрыть апертурную диафрагму приблизительно на 1/3 хода, добиваясь четкого появления окраски объектов изображения в препарате и достаточной глубины резкости.

Заменить окуляр в правом окулярном тубусе на точечную диафрагму (из комплекта микроскопа) или на дополнительный микроскоп МИР-4, который предварительно настроить на изображение. В первом случае будет видна яркая нить накала лампы. Уменьшая силу света, необходимо добиться изображения нити. Она должна иметь сфокусированное изображение. В случае использования дополнительного окуляра при правильно настроенном микроскопе будет наблюдаться следующая картина: темный диск, заполняющий поле зрения, и тонкая полоска света по диаметру выходного зрачка микрообъектива (должно быть перекрыто «9/10 диаметра выходного зрачка).

Заменить точечную диафрагму или микроскоп на рабочий окуляр и приступить к наблюдению препарата в светлом поле. Для большего комфорта можно вставить матовое стекло в тракт прохождения света, добавив света реостатом лампы.

Этой манипуляцией завершается настройка микроскопа.

Многие современные микроскопы оснащены центрированными и неподвижными конденсорами, что облегчает процедуру настройки. Регулировка осуществляется только с помощью открытия апертуры ирисовой диафрагмы до 70-80%,что обеспечивает равномерное освещение поля зрения.

Правила эксплуатации микроскопа.

Если микроскоп временно не используется, следует хранить его в футляре или накрывать пластиковым чехлом.

Повышенная влажность воздуха помещения, в котором находится микроскоп, может способствовать размножению на линзах плесневых грибов и появлению ржавчины на металлических частях прибора. Для снижения влажности воздуха в футляр микроскопа следует поместить чашку Петри с сухим силикагелем (имеет голубой цвет). Когда силикагель насытится влагой и не сможет более абсорбировать воду, его цвет изменится с голубого на розовый. В таком случае силикагель можно заменить новым или дегидратировать его в сухожаровом шкафу. После восстановления первоначального цвета силикагель можно использовать повторно.

Для удаления налета плесневых грибов используется ватный тампон, смоченный в растворе противогрибкового препарата. Этим тампоном круговыми движениями аккуратно протирают загрязненные линзы. При необходимости такую обработку можно повторить, а затем насухо протереть линзы специальной мягкой тканью.

Нельзя хранить микроскоп поблизости от химических реактивов и кислот, а также в помещениях или местах с высокой влажностью.

При переносе микроскопа следует держать его двумя руками — за штатив и за основание. Нельзя переносить микроскоп, держа его только

одной рукой. Следует избегать необоснованно частых перемещений микроскопа.

Микроскоп следует устанавливать на прочной ровной поверхности. В непосредственной близости от него нельзя устанавливать оборудование, вызывающее вибрацию (например, центрифуги).

Если микроскоп используется каждый день, желательно держать его на одном постоянном месте, накрывая после работы полиэтиленовым или пластиковым чехлом.

На линзах микроскопа от грязи или песчинок могут появиться царапины. Объективы протираются только специальной мягкой тканью для линз или марлевой салфеткой. Окуляры наиболее чувствительны к неправильному обращению. Они должны чиститься мягкой кистью или струей сухого воздуха (от небольшой груши). Нельзя использовать растворители для очистки линз окуляров.

Не следует допускать попадания иммерсионного масла на предметный столик микроскопа. Во избежание контаминации мазков в процессе микроскопического исследования и получения ложноположительных результатов после просмотра каждого очередного препарата следует тщательно вытирать объектив от иммерсионного масла.

Необходимо следить, чтобы иммерсионное масло не попадало на неиспользуемые объективы, находящиеся в револьвере микроскопа. При случайном загрязнении необходимо сразу же тщательно их вытереть.

Нельзя никогда разбирать микроскоп; в случае появления какой-либо неисправности ремонт должен производиться только специалистом.

Для сохранения микроскопа в рабочем состоянии необходимо соблюдать следующие правила.-

После использования в течение рабочего дня необходимо:

проверить фиксацию объективов в револьверном устройстве; удалить с помощью ксилола, спирто-эфирной смеси или 70° спирта масло с объектива, конденсора и предметного столика; несколько приподнять предметный столик, не допуская соприкосновения с ним объективов, но в то же время и не оставляя их на длительное время в верхнем положении; установить регулятор напряжения на минимальное значение; выключить источник света; накрыть микроскоп чехлом.

Так как основными загрязнителями оптической системы микроскопов и наиболее частой причиной их выхода из строя являются пыль и грибы, во внерабочем состоянии микроскоп всегда должен быть накрыт чехлом и храниться в сухом помещении.

Для сохранности иммерсионных объективов следует обратить особое внимание на правильное выполнение их очистки от остатков иммерсионного масла. Очистку объектива рекомендуется производить следующим образом:

вывинтить объектив из револьверного устройства или установить его в положение, удобное для чистки;

сухим ватным тампоном одним движением руки снять

иммерсионное масло с передней линзы объектива;

смочить следующий сухой тампон в смеси спирта и эфира с

таким расчетом, чтобы он был слегка увлажненным;

круговым движением, не вдавливая линзу внутрь объектива

(конденсора), аккуратно протереть ее;

при сильном загрязнении операцию можно повторить, используя

чистый, вновь смоченный тампон;

по окончании очистки линзу протирают сухим тампоном. Операции очистки следует проводить очень аккуратно и осторожно; необходимо следить за количеством увлажняющей тампон смеси; тампон должен быть слегка увлажненным. Ежемесячно необходимо:

удалить пыль с корпуса микроскопа специальной щеткой с

подачей воздуха (простое устройство может быть сделано из

пастеровской пипетки и прикрепленной к ней резиновой груши);

очистить объективы, окуляры и конденсоры тампоном или

кусочком специальной ткани, смоченной ксилолом, спирто-

эфирной смесью или спиртом;

снять с предметного столика препаратоводитель предметных

стекол и очистить его;

протереть влажной тканью отверстие источника света в

основании микроскопа.

Через каждые 6 месяцев микроскоп должен подвергаться профилактическому осмотру, чистке и смазке, которые проводятся специалистом.