Жизненные формы. Бентос. Классификация методы исследования фито- и зообентоса

Бентос — совокупность растительных и животных организмов, обитающих на дне и в толще донных осадков. Различают макробентос — организмы, имеющие размеры более 1 мм, и микробентос — организмы, имеющие размеры менее 1 мм. Бактериобентос представлен аэробными и анаэробными сапрофитами. Фитобентос значительно развит только в водоемах с прозрачной водой. Наиболее богат бентос животными организмами: простейшими, коловратками, олигохетами, нематодами, личинками насекомых, моллюсками. Видовой состав зообентоса зависит от характера и степени загрязненности грунта

19 Планктон. Классификация методы исследования фито- и зоопланктона.

Планктон (греч. πλανκτον — блуждающие) — разнородные, в основном мелкие организмы, свободно дрейфующие в толще воды и неспособные — в отличие от нектона — сопротивляться течению. Такими организмами могут быть бактерии, диатомовые и некоторые другие водоросли (фитопланктон), простейшие, некоторые кишечнополостные, моллюски, ракообразные, яйца и личинки рыб, личинки различных беспозвоночных животных (зоопланктон). Планктон непосредственно или через промежуточные звенья пищевой цепи является пищей для большинства остальных водных животных.

· голопланктон — весь жизненный цикл проводит в форме планктона;

· меропланктон — существующие в виде планктона лишь часть жизни, например, морские черви, рыбы.

Методы сбора планктона
Конечно, идеально было бы собрать и учесть всех животных планктона. Однако это сложно из-за огромной разницы в их размерах: от 20 мкм до нескольких миллиметров. Методы, описанные в данном пособии, позволяют проводить учеты организмов микропланктона – с размерами от 50 мкм до 1 мм, и мезопланктона – более 1 мм.
К первым относятся коловратки, личинки веслоногих рачков, ветвистоусые рачки Bosmina, Diaphanosoma, а ко вторым – рачки родов Daphnia, Polyphemus и др. Метод отбора проб зависит от типа водоема, его глубины и размера.
Планктонная сеть (в простейшем виде – сеть Апштейна) представляет собой сачок, изготовленный из специальной ткани (плактонного газа), пропускающей воду и задерживающей планктон, с резервуаром для сбора животных (рис. 1, а).

Рис. 1: а – планктонная сеть Апштейна, б – планктонный стакан
Планктонную сеть можно изготовить самостоятельно. Для этого необходима ткань мельничного сита (ячеи 0, 1–0, 15 мм), несколько кусков проволоки, плотная ткань и планктонный стакан (рис. 1, б). В качестве планктонного газа можно использовать и парашютный капрон, но ни в коем случае не марлю – она очень мягкая и диаметр ячеи слишком большой.
Имеющийся в наличии материал выкраивается в виде конуса и пришивается к металлическому обручу в верхней части и к планктонному стакану в нижней. В обоих случаях пришивать газ следует не непосредственно к обручу или стакану, а к полоске ткани (льна, бязи, х/б), иначе он быстро прорвется в местах соединения.
В гидробиологическом мониторинге приняты два стандартных размера планктонной сети – с диаметром входного отверстия 25 или 40 см и длиной конуса 55 или 100 см соответственно.
Планктонный стакан можно заменить любым стеклянным или пластмассовым сосудом (например пузырьком из-под силикатного конторского клея с вырезанным дном) с устройством для слива пробы через дно (например, на горлышко пузырька надевается резиновая трубка с аптекарским зажимом или просто отверстие затыкается резиновой пробкой). Место соединения стакана и сети обшивается тканью (благо пластмассу можно прошить).
Основные формы использования планктонной сети – траление и процеживание.

Траление
При проведении гидробиологического исследования методом траления следует брать 3 пробы планктонной сетью с лодки, облавливая слой глубин от 10 м до поверхности. Если глубина водоема менее 10 м, то траление следует проводить по всей его глубине, стараясь, однако, не опускать сеть на самое дно, так как при этом в нее попадет много мути и донных животных, не относящихся к планктону.
Для определения глубины, на которую была опущена сеть, на веревке нужно сделать отметки – например через каждый метр навязать узелки или нашить цветные ленточки или тесьму.
Процеживание
Зачерпывание воды с целью ее процеживания производят сосудом определенного, заранее известного, объема – например ведром. Пробы воды «сгущают», выливая их в планктонную сеть. При этом вода выливается через стенки сети, а планктон оседает в планктонном стакане.
Метод процеживания чаще всего используется для изучения прибрежного планктона, видовой состав которого отличается от такового в центре водоема.
При обработке проб, собранных как тралением, так и процеживанием, результаты приводят к стандартному объему, например к 1 л. Объем столба воды, обловленного при тралении, определяют, зная глубину, на которую была опущена и с которой поднималась сеть (по отметкам на веревке), и площадь горловины сети (определяется, исходя из диаметра обруча). Объем процеженной воды определяют, умножая объем одного ведра на число зачерпнутых ведер.
Необходимый для получения достоверных данных объем, в котором собирается проба, зависит от численности зоопланктона и колеблется в пределах от 10 (в богатых водоемах летом) до 200 (зимой) литров.
Послойный отбор проб с помощью батометра
Батометры – приборы различной конструкции для взятия проб воды с разных глубин. В классическом виде это цилиндры, которые можно опустить на определенную глубину, там закрыть и извлечь.
Самостоятельно изготовить классический батометр непросто. Но вместо него можно использовать простую стеклянную или пластиковую бутылку с узким горлышком, утяжеленную каким-либо грузом и заткнутую пробкой, идеально – корковой. К горлышку бутылки и к пробке привязываются веревки (рис. 2).

Рис. 2. Самодельный батометр

Опустив бутылку на нужную глубину (главное, чтобы она тонула, для этого и нужен груз), необходимо выдернуть пробку – поэтому затыкать ее туго не следует. Дав бутылке время наполниться на нужной глубине (1–2 мин), ее вытаскивают на поверхность. Делать это следует как можно более энергично – при большой скорости подъема и узком горлышке вода из вышележащих слоев практически не попадет внутрь.
Пробы, поднятые на поверхность с помощью батометра, также следует «сгущать», используя планктонную сеть (как это описано выше), а затем рассчитывать объем процеженной воды.
Поскольку этот объем должен быть, по возможности, большим, батометр следует делать как можно большего размера, например использовать 2-литровую стеклянную или пластиковую бутылку или какой-либо еще сосуд большого размера с узким горлом.
На веревке, к которой привязана бутылка, также следует сделать отметки через каждый метр – для определения глубины отбора проб.
Когда брать пробы?
Для отслеживания сезонных изменений в пресноводном сообществе пробы обычно берут 2 раза в месяц. Для приблизительных оценок можно предложить следующий график отбора проб (для условий средней полосы).
1. Начало мая (начало подъема численности различных животных).
2. Конец мая (пик численности веслоногих ракообразных и их личинок).
3. Начало – середина июня (пик численности дафний).
4. Конец июня («цветение» водоема, угнетенное состояние зоопланктона, развитие мелких форм).
5–7. По одной пробе в июле, августе, сентябре.
8. Октябрь (в это время можно обнаружить самцов ветвистоусых ракообразных, которых зачастую легче определить до вида).

20. Жизненные формы пелагиали. Нейстон, плейстон, нектон. Классификация, методы исследования.

Нектон (от греч. nektós — плавающий, плывущий), совокупность активно плавающих пелагических животных, способных противостоять силе течения и перемещаться на значительные расстояния. К Н. относятся рыбы, кальмары, китообразные, ластоногие, водные змеи, черепахи, пингвины. Для нектонных животных характерны обтекаемая форма тела и хорошо развитые органы движения. Н. противопоставляют планктону; промежуточное положение между ними занимает микронектон, представленный животными, способными к ограниченным активным перемещениям: молодь и мелкие виды рыб и кальмаров, крупные креветки, эвфаузиевые рачки и др.

Нейстон (от греч. neustós — плавающий), совокупность организмов, прикрепляющихся к поверхностной плёнке воды, передвигающихся по ней сверху (эпинейстон) или снизу (гипонейстон). Н. составляют: простейшие, одноклеточные водоросли, клопы-водомерки, жуки-вертячки, личинки комаров, некоторые ветвистоусые рачки, лёгочные моллюски и др. мелкие, большей частью пресноводные, организмы. К морскому гипонейстону относят также обитателей самого верхнего слоя воды (0—5 см), которые живут там круглосуточно или только ночью (мелкие рачки, мальки рыб и др.).

Плейстон (от греч. plēusis — плавание, plēō — плыву), совокупность водных организмов, держащихся на поверхности воды или полупогружённых в неё. Наиболее разнообразны представители морского П. Для многих организмов П. характерно образование газовых камер (например, сифонофора физалия) или выделение пенистых поплавков (актиния миниас, моллюск янтина и др.); другие используют как опору поверхностную плёнку воды (например, моллюск глаукус). Из растений к П. относятся, например, саргассовые водоросли.

21. Дыхание гидробионтов: основные понятия, виды дыхательных поверхностей и их особенности.

В насыщенной кислородом воде содержание его не превышает 10 мл в 1 л, это в 21 раз ниже, чем в атмосфере. Поэтому условия дыхания гидробионтов значительно усложнены. Кислород поступает в воду в основном за счет фотосинтетической деятельности водорослей и диффузии из воздуха. Поэтому верхние слои водной толщи, как правило, богаче этим газом, чем нижние. С повышением температуры и солености воды концентрация в ней кислорода понижается. В слоях, сильно заселенных животными и бактериями, может создаваться резкий дефицит О2 из-за усиленного его потребления. Например, в Мировом океане богатые жизнью глубины от 50 до 1000 м характеризуются резким ухудшением аэрации – она в 7-10 раз ниже, чем в поверхностных водах, населенных фитопланктоном. Около дна водоемов условия могут быть близки к анаэробным.

Среди водных обитателей много видов, способных переносить широкие колебания содержания кислорода в воде, вплоть до почти полного его отсутствия (эвриоксибионты – «окси» – кислород, «бионт» – обитатель). К ним относятся, например, пресноводные олигохеты Tubifex tubifex, брюхоногие моллюски Viviparus viviparus. Среди рыб очень слабое насыщение воды кислородом могут выдерживать сазан, линь, караси. Вместе с тем ряд видов стеноксибионтны – они могут существовать лишь при достаточно высоком насыщении воды кислородом (радужная форель, кумжа, гольян, ресничный червь Planaria alpina, личинки поденок, веснянок и др.). Многие виды способны при недостатке кислорода впадать в неактивное состояние – аноксибиоз – и таким образом переживать неблагоприятный период.

Дыхание гидробионтов осуществляется либо через поверхность тела, либо через специализированные органы – жабры, легкие, трахеи. При этом покровы могут служить дополнительным органом дыхания. Например, рыба вьюн через кожу потребляет в среднем до 63 % кислорода. Если через покровы тела происходит газообмен, то они очень тонки. Дыхание облегчается также увеличением поверхности. Это достигается в ходе эволюции видов образованием различных выростов, уплощением, удлинением, общим уменьшением размеров тела. Некоторые виды при недостатке кислорода активно изменяют величину дыхательной поверхности. Черви Tubifex tubifex сильно вытягивают тело в длину; гидры и актинии – щупальцы; иглокожие – амбулакральные ножки. Многие сидячие и малоподвижные животные обновляют вокруг себя воду, либо создавая ее направленный ток, либо колебательными движениями способствуя ее перемешиванию. Двустворчатым моллюскам для этой цели служат реснички, выстилающие стенки мантийной полости; ракообразным – работа брюшных или грудных ножек. Пиявки, личинки комаров-звонцов (мотыль), многие олигохеты колышут тело, высунувшись из грунта.

У некоторых видов встречается комбинирование водного и воздушного дыхания. Таковы двоякодышащие рыбы, сифонофоры дискофанты, многие легочные моллюски, ракообразные Gammarus lacustris и др. Вторичноводные животные сохраняют обычно атмосферный тип дыхания как более выгодный энергетически и нуждаются поэтому в контактах с воздушной средой, например ластоногие, китообразные, водяные жуки, личинки комаров и др.

Нехватка кислорода в воде приводит иногда к катастрофическим явлениям – заморам, сопровождающимся гибелью множества гидробионтов. Зимние заморы часто вызываются образованием на поверхности водоемов льда и прекращением контакта с воздухом; летние– повышением температуры воды и уменьшением вследствие этого растворимости кислорода.

Частая гибель рыб и многих беспозвоночных зимой характерна, например, для нижней части бассейна реки Оби, воды которой, стекающие из заболоченных пространств Западно-Сибирской низменности, крайне бедны растворенным кислородом. Иногда заморы возникают и в морях.

Кроме недостатка кислорода, заморы могут быть вызваны повышением концентрации в воде токсичных газов – метана, сероводорода, СО2 и др., образующихся в результате разложения органических материалов на дне водоемов.

22 Водно-солевой обмен гидробионтов: основные понятия. Пресноводные и морские гидробионты различия в осуществление водно-солевого обмена.

Обитание в разных условиях приводит к проявлению различного типа адаптаций. По характеру водно-солевого обмена гидробионты довольно четко делятся на пресноводных и морских, хотя некоторые и эвригалинные

Водно-солевой обмен в водных организмов протекает иначе, чем у наземных, так как гидробионты, находясь в воде, испытывают на себе действие осмотического давления. Поверхность водных организмов в той или иной степени проницаема для различных веществ, поэтому при гипо-или гипертонии среды для гидробионтов создается угроза нарушения гомеостаза (изменение концентрации и соотношения отдельных ионов, обводнение и обезвоживания тканей и др..). Постоянство химического состава тела является одним из важнейших условий гомеостаза, и поэтому в гидробионтов выработался ряд адаптаций, позволяющих им сохранять стабильность водно-солевого обмена. В первую очередь речь идет об обеспечении постоянства осмотического давления, т.е. возможности предупреждения избыточного обводнения или обезвоживания организма, изменения его химического состава. При этом клетки должны не только уметь удерживать большое количество ионов от уравновешивания с внешней средой, но и обладать способностью «распознавать» различные ионы и регулировать их концентрации в соответствии с физиологическими потребностями.

В простейшем случае гидробионты изоосмотическими с окружающей средой, хотя имеют иное соотношение ионов, чем в последней. Энергия при этом затрачивается только на поддержание градиентов концентрации отдельных ионов. Такой тип организации водно-солевого обмена характерен для многих морских организмов, в основном микроорганизмов и беспозвоночных. При другом типе регуляции гидробионты поддерживают не только специфическое соотношение отдельных ионов, но и определенное осмотическое давление, отличный от имеющегося в среде. Такой тип, требует большего энергетического обеспечения, однако создает стабильность не только соотношение, но и абсолютных концентраций ионов, свойственный пресноводным и высокоорганизованным морским организмам. Есть существенная разница в организации водно-солевого обмена у одноклеточных и многоклеточных организмов. Первые осуществляют регуляторные функции только на одной поверхности раздела - между внешней средой и клеткой. У многоклеточных кроме этого механизма регуляции действует и другой - между клетками и внутренними жидкостями, в частности кровью.

В пресноводных и морских организмов адаптации к водно-солевого обмена происходили по-разному. Концентрация ионов в тканях всех животных и растений намного выше, чем в пресной воде, поэтому у жителей последней возникли механизмы, позволяющие поддерживать гомойосмотичнисть в резко гипотоническому среде. Для морских организмов оказались возможными два пути. Первый из них, более древний, - изотонии, при которой влияние физико-химических процессов сводится к минимуму. Вместе с тем высокая постоянство концентрации и соотношения различных ионов в морской воде создают для гидробионтов условия, имитирующие гомойосмотичнисть. Другой путь - обеспечение постоянства содержания в организме воды и отдельных ионов за счет выработки соответствующих регуляторных механизмов. Такой путь более прогрессивный, так как позволяет не только поддерживать стабильность тоничности и соотношение ионов, но также задавать этим состояниям оптимальный уровень, чего не позволяет первый способ. Наличие соответствующей адаптации, лежащие в основе евригалинности, позволяет многим гидробионтов существовать в биотопах с неустойчивым солевым режимом. Защита от осмотического обводнение и обезвоживания достигается выбором среды с той или иной Тоничность, осморегуляции и осмоизоляциею. Постоянство солевого состава достигается ионной регуляцией, что обеспечивает сбалансированность процессов поступления и выведения различных ионов из окружающей среды. Ряд адаптаций направлен на обеспечение выживания гидробионтов при пересыхании водоемов, временном осушении биотопов (отливы и др.). Выходе из воды и высыхании.

23 Типы питания гидробионтов, классификация голозойного питания.

Три типа питания:

-Авторофное

-Гетеротрофное

-Миксотрофное

Типы гетеротрофного питания:

1.Голозойный-сложный комплекс пищеварительных ферментов.Организм может употреблять в пищу сложные,чаще твердые орган соединения.(Захват и поглощение пищи)

2.Сапротрофный-растворами простых орган соединений.Иногда происходит выделение ферментов на субстрат а потом всасывание.

3.Мутуалистический – ор-мы существуют совместно,получая от этого взаимную выгоду.

4.Паразитический

Голозойный тип питания:

· Фильтрация

-пассивная, током воды (фораминиферы, радиолярии)

-активная (губки,кишечнополостные,моллюски)

· Детритофагия – питание разлагающимся орган материалом, падалью (кольч черви, рыбы, морской заяц)

-собирающие,собирают почвенный детрит

-грунтоеды

Всегда обитают в местах с ослабленной гидродинамикой, мелкозернистым грунтом и с повышенным содержанием орган углерода.

· Пастьба – способ питания характерный для животных пищей для кот служат скопления водорслей (морские ежи, моллюски, литорины) Скобление волорослей

· Охота – добыча активно преследуется (охотниками) либо караулится (засадники) осьминоги,рыбы

24. Эффективность питания, кормовые ресурсы и ритмы питания гидробионтов.

1. Пища должна быть полноценной (микроэлементы, витамины, аминокислоты и др.).

2. Пища должна хорошо усваиваться. Чем больше пищи, тем менее эффективно она переваривается! Плохо переваренная и выброшенная в воду пища ускоряет круговорот биогенов в водных экосистемах, поскольку в воде такая пища подвергается деструкции м/о.

В тропической зоне Тихого Океана усвояемость пищи у рыб, питающихся водорослями и детритом составляет 45-60 %, у всеядных животных – 30-60 %, у хищников – до 85 %.

3. Необходима энергетическая выгодность потребления того или

иного пищевого объекта или корма. Например, китам «не выгодно» питаться крилем в концентрации ниже 2 г/м3.

РИТМЫ ПИТАНИЯ:

Внешние факторы ритмичности питания:

- приливы и отливы

- время суток

- фазы луны

- сезоны года

- гидродинамика

-температура, соленость и др.

Эндогенные факторы ритмичности питания:

1. Период созревания половых продуктов (офиуры, морские звезды не питаются в течение месяца и более)

2. Период нереста (дальневосточные лососевые и многие-многие другие рыбы, и не только).

3. Период охраны развивающихся яиц и молоди (осьминоги, крабы, акулы, костистые рыбы)

КОРМОВЫЕ РЕСУРСЫ ГИДРОСФЕРЫ:

Соотношение органики в живых организмах, во взвеси (детрите) и в РОВ соотносится как: I: 10: 100.

РОВ: около 75 % - легкоусваяемые компоненты, 25 % -трудно.

Кол-во РОВ постоянно пополняется за счет:

- отмирания и разложения организмов

- выноса организмов и органики реками (около 6 млрд тонн в год)

- прижизненного выделения органики, особенно водорослями

Фитопланктон выделяет в воду до 30-40, в среднем 15 % такой органики.

Количество РОВ в Мировом океане около 500 млрд тонн.Количество ВОВ (детрит) в Мировом океане – 50 млрд тонн!

ВОВ состоит в основном из трудноусвояемой органики, но бактерии редуцируют и эту органику. Кол-во бактерий в детрите около 4-5 % по массе.Усилению роли бактерий как объектов питания

способствует их агрегированность. Многие беспозвоночные гидробионты такие агрегации видят.

Органика донных отложений также минерализуется бактериями – аэробами и анаэробами.

Ведущую роль в питании большинства гидробионтов, особенно многоклеточных, играет живая органика.

25. Продуктивность популяций гидробионтов

Продуктивность это скорость производства биомассы в ед времени,кот нельзя взвесить,а можно только рассчитать(скорость продуцирования)экосистеме

Продуктивность экосистемы говорит о ее «богатстве»

· Текущая

· Общая

4 стадии процесса производства орган в-ва:

1. Валовая первичная продуктивность – общая скорость накопления орг в-ва продуцентами+дыхание и секреторные ф-ции

2. Чистая первичная продуктивность – скорость накопления орган в-ва за вычетом тех,что были израсходованы при дыхании и секреции. Эта энергия может быть использована на след уровнях

3. Чистая продуктивность сообщества – орган в-во оставшееся после потребления гетеротрофами консументами(чистая продукция – потребление гетеротроф)

4. Вторичная продуктивность – скорость накопления энергии консументами. Распределение энергии и вещества в экосистеме может быть представлена в виде системы уравнений: если продукция продуцентов Р1, то продукция консументов 1го порядка Р2=Р1-R2 R2 – затраты на дыхание,неассимилир энергия.

Продуктивность популяции – сумма всех приростов особей явл в наличии так и вновь рожденных и прирост который в силу потребления и др причин не входит в конечную биомассу популяции.

Важной хар-кой популяции является размерно-возрастная структура

4 типа популяций:

1. Поп 1го типа: одновозр особи, совокупности одновременно рожденных особей(копеподы, калянус)

2. Поп 2го типа5: присутсв особи разного возраста, совокупность нескольких поколений или когорт особей опр года рождения

3. Поп 3го типа: особи всех возрастов, но из за непрерывного размножения распределение особей не дискретное, а непрерывное(ветвистоусые ракообр)

4. Поп 4го типа: непрерывное размножение и короткий период индивидуального развития. Выделение размерно-возраст групп невозможно (бактерии, простейшие, коловратки)

26. Методы расчёта продуктивности гидробионтов.

Первая группа методов основывается на изучении динамики популяций

и их возрастного состава. Продукция при таком расчете определяется по

формуле:

Р = Ве + (В2 - В1) (уравнение балансового равенства Бойсен - Йенсена

1919),

где Ве - элиминированная биомасса,

В1 и В2 - биомасса в начале и конце периода наблюдений

Физиологический способ расчета:

Необходимо знать численность животных в популяции(N) их вес (W)

коэффициент использования энергии усвоенной пищи на рост (К2)

и трат на обмен (R) - при параболическом росте животных прирост его оп-

ределяется по формуле:

Р = R (К2/1-К2)NW

W-расчет по увеличению этой зависимости этой хар-ки от размеров/длины тела.

Метод Яблонской и Лукониной:

Р=Ве*Вт

Биомасса убыли: Ве=│[N1-(N2-Nq)][B1/N1+(B2-Bq)/(N2-Nq)]/2

N1,N2- число организмов в двух последовательных сериях наблюдений; Nq–численность молоди родившейся между наблюдениями; В1, В2- биомасса; Вq- биомасса народившейся молоди;

Графический метод основан на изучении характера и темпов роста особей в течении всего жизненного цикла и изменений численности популяции. Является наиболее точным и надежным способом определения продукции популяции с постоянным пополнением.

27. Сапробность. Характеристика основных зон.

сапробность (от греч— гнилой) – “это комплекс физиологических свойств данного организма, обуславливающий его способность развиваться в воде с тем или иным содержанием органических веществ, с той или иной степенью загрязнения”

Биологический смысл понятия сапробности заключается примерно в следующем. При нарастании органического загрязнения водоема в толще воды и особенно на дне параллельно возрастает содержание мертвого органического вещества (как правило, легко разлагаемого) и понижается содержание кислорода (именно из-за гниения органики); то есть сдвигается органико-кислородный баланс. Сапробность и есть мера этого баланса. Повышение сапробности угнетает одни организмы (из-за недостатка кислорода), но благоприятно для других (требовательных к большому количеству пищи), то есть вызывает смену состава водных сообществ. Дело в том, что и в природе (без всяких антропогенных загрязнений) разные водоемы имеют разный естественный фон сапробности, и их обитатели также приспособлены к разным условиям. Одни водоемы (горные и северные озера, горные реки и ручьи) несут очень мало органических веществ и всегда насыщены кислородом – олигосапробны. Другие (большинство равнинных рек и озер) имеют умеренный фон органического питания (мезосапробны). Наконец, многие мелкие стоячие водоемы (пруды и болота), особенно в теплых и засушливых районах, перенасыщены разлагающейся органикой и почти лишены растворенного кислорода (полисапробны). Соответственно, коренные обитатели этих зон называются олиго-, мезо- и полисапробами. Было замечено также, что полисапробные организмы обычно лучше переносят и химические загрязнения (например, ядохимикатами или тяжелыми металлами), а также повышенную температуру и минерализацию воды. Это дает возможность применять сапробность и для оценки промышленных загрязнений водоемов.

Строгого соответствия между сапробностью и гидрохимическими показателями воды нет и быть не может. На качественном уровне еще Кольквитц и Марссон описывали химические градации сапробности следующим образом:

Олигосапробная зона – чистые воды, соединения азота в форме нитратов, вода насыщена кислородом; углекислоты в воде мало, сероводорода нет.

β-мезосапробная зона – соединения азота в форме солей аммония, нитритов и нитратов; кислорода обычно много, но возможны заморы у дна и ночью из-за прекращения фотосинтеза, сероводород иногда в небольшом количестве, характер биохимических процессов окислительный.

α-мезосапробная зона – присутствуют амино- и амидо- кислоты, условия среды полуанаэробные, характер биохимических процессов востановительно-окислительный; присутствует сероводород.

Полисапробная зона – в воде разлагающиеся белки, условия среды анаэробные, характер биохимических процессов восстановительный, в воде много сероводорода.