Полезное:
Как сделать разговор полезным и приятным
Как сделать объемную звезду своими руками
Как сделать то, что делать не хочется?
Как сделать погремушку
Как сделать так чтобы женщины сами знакомились с вами
Как сделать идею коммерческой
Как сделать хорошую растяжку ног?
Как сделать наш разум здоровым?
Как сделать, чтобы люди обманывали меньше
Вопрос 4. Как сделать так, чтобы вас уважали и ценили?
Как сделать лучше себе и другим людям
Как сделать свидание интересным?
Категории:
АрхитектураАстрономияБиологияГеографияГеологияИнформатикаИскусствоИсторияКулинарияКультураМаркетингМатематикаМедицинаМенеджментОхрана трудаПравоПроизводствоПсихологияРелигияСоциологияСпортТехникаФизикаФилософияХимияЭкологияЭкономикаЭлектроника
|
Выделение и идентификация свиных микоплазмКультивирование. Выделение культур M.hyopneumoniae проводят путем посева исследуемого материала в жидкие питательные среды, т.к. на плотных средах в первичных посевах данный вид микоплазм растет плохо. Образцы исследуемого материала рекомендуют высевать в среду на основе перевара Хоттингера с дрожжевым и печеночным автолизатом. Отдельные ученые предлагают использовать модифицированную среду ВИЭВ на основе мартеновского бульона с добавлением сыворотки крови лошади, экстракта дрожжей, глюкозы, лактальбуминагидролизата. В исследуемом материале достаточно часто могут присутствовать другие виды микоплазм, в том числе растущие более быстро, чем M.hyopneumoniae, что затрудняет выделение и идентификацию культур возбудителя. Наиболее эффективно использование среды Friss с добавлением антисыворотки против M.hyorhinis и циклосерина, что обеспечивает ингибицию роста M.flocullate и M.hyorhinis. Рекомендуется тканевой материал после измельчения в питательной среде в ступке или гомогенизаторе подвергнуть центрифугированию при 1,5 тыс. об/мин в течение 15 минут, надосадочную жидкость обработать ацетатом таллия и пропустить через стерилизующие фильтры, посеять на среды для микоплазм и с целью контроля на МПА, МПБ, среду Кита-Тароцци. Инкубирование проводить при 37° С до 10 суток с ежедневным просмотром сред. При отсутствии изменений в среде через 4-6 суток делают до 2-5 «слепых пассажей» с параллельными высевами на плотные среды. Другие исследователи предлагают следующую апробированную схему бактериологического исследования: тканевый гомогенат (1:10) разводят в среде Friss до 104 и инкубируют при 37° С до трех недель. M.hyopneumoniae лучше растет, если культивирование осуществляется роллерным способом. Посевы просматривают ежедневно на наличие помутнения и изменения рН. В положительных случаях помутнение среды слабое, рН меняется обычно на 5-6-е сутки, при малом содержании возбудителя — позднее. Аналогичные измения на среде Friss без циклосерина и антисыворотки против M.hyorhinis могут вызвать M.flocullate и M.hyorhinis, причем последний вид растет быстро. Параллельно один миллилитр разведения 102 добавляют к 50 мл среды, пропускают через целлюлозный фильтр с диаметром пор 0,2 мкм. Затем фильтр помещают в питательную среду, культивируют, отслеживая изменения рН, споласкивают, высушивают и исследуют на наличие микроколоний в непрямой реакции иммунофлуоресценции. При подозрении на инфекцию M.hyorhinis (полиартриты, полисерозиты) производят посев материала на среду Friss без циклосерина, антисыворотки или на другие среды для микоплазм, на большинстве из которых этот вид микоплазм хорошо растет. Из материала делают разведения на среде Friss до 103-104, инкубируют при 37° С, отслеживая изменения рН, появление помутнения. При наличии бактериальных контаминатов отмечают интенсивное помутнение среды в низких разведениях, закисление или защелочение рН. С целью выявления M.hyosynoviae материал (суставная жидкость, синовиальные мембраны) измельчают 1:10 и готовят на бульоне для M.hyosynoviae разведения 103-104. Посевы инкубируют при 37° С с ежедневным контролем. Рост M.hyosynoviae сопровождается слабым помутнением среды или его отсутствием, защелочением рН и образованием пленки, на стенках пробирки формируется мыло-подобный налет. При посеве на агаризованную среду (7% агар Нобеля) большинство штаммов образуют пленки и пятна, а также отложения на колониях «перламутровых кристаллов». Выделение чистых культур M.hyopneumoniae, M.hyorhinis и M.hyosynoviae проводят по стереотипной схеме. Идентификация выделенных культур микоплазм. Выделенные чистые культуры микоплазм идентифицируют по совокупности культуральных, ферментативных признаков, гемагглютинирующей активности. При этом определяют способность микоплазм утилизировать глюкозу, маннозу, аргинин, разжижать желатин, казеин, сыворотку, редуцировать тетразол, образовывать фосфатазу, пленки и пятна при росте на питательных средах, а также агглютинировать эритроциты. Характеристики основных видов свиных микоплазм приведены в таблице 94. При идентификации M.hyopneumoniae в реакции иммунофлуоресцен-ции рекомендуется 2 мл первичной культуры в разведении 101 пропустить через мембранный фильтр с порами диаметром 0,2 мкм, потом поместить их в среду Friss и инкубировать при 37° С 5-6 дней, что приводит к образованию на фильтрах микроколоний возбудителя, которые идентифицируют непосредственно на мембранных фильтрах следующим образом. Таблица 96 - Дифференциальные признаки свиных микоплазм
Примечание: аэробно/анаэробно, w — слабая реакция, н.д. — нет данных. Фильтр помещают в стерильный фосфатно-солевой буферный раствор (рН 7,5) и отмывают на магнитной мешалке в течение 10 минут. Фильтр берут пинцетом и ополаскивают в аналогичном буфере. Просушивают мембраны на стерильной фильтровальной бумаге, подписывают, разрезают на 3 части, в соответствии с подписями (1,2,3). Каждую часть фильтра помещают в лунку планшета; к отдельным частям фильтра добавляют предварительно разведенные сыворотки M.hyopneumoniae, M.flocullate и нормальную кроличью сыворотку, инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут. Каждую часть фильтра споласкивают в фосфатно-солевом буфере (рН 7,5), а затем отмывают в аналогичном растворе на магнитной мешалке в течение 10 минут. Фрагменты фильтра просушивают на бумаге, вновь помещают раздельно в лунки планшета, к каждому сегменту фильтра добавляют рабочее разведение антикроличьей люминесцирующей сыворотки и инкубируют при комнатной температуре в течение 30 минут. Споласкивают в фосфатно-солевом буфере (рН 7,5), затем отмывают в аналогичном растворе при помощи магнитной мешалки в течение 10 минут. Подсушивают кусочки фильтра на бумаге, помещают все три фрагмента на предметное стекло, наносят на них по капле забуференного глице рина, покрывают покровным стеклом и исследуют при помощи люминесцентного микроскопа как при методе эпифлуоресцеиции. При исследовании антисыворотку M.hyopneumoniae необходимо проверить на перекрестные реакции с M.flocullate. При обнаружении реагирующих антител проводят адсорбцию сыворотки: 10 мл антисыворотки M.hyopneumoniae смешивают с центрифугатом 100 мл бульонной культуры M.flocullate, смесь выдерживают 1 час при 37° С, ночь при 4° С, центрифугируют, над осадочная жидкость представляет собой адсорбированную иммунную сыворотку. Обычно идентификацию микоплазм осуществляют методом флуоресцентного окрашивания колоний на агаровой среде Friss или на мембранных фильтрах. Тест ингибиции роста также может быть использован для этой цели, но из-за штаммовых антигенных различий результат может быть неоднозначным. Идентификацию культур M.hyosynoviae осуществляют на основании изучения признаков, а также в тесте ингибиции роста, иммунофлуоресцентного окрашивания колоний на агаровой среде или микроколоний на мембранных фильтрах. Биопроба. Используют при диагностике инфекции, вызываемой M.hyopneumoniae. Для заражения берут поросят-сосунов или животных 2-3-месячного возраста, желательно выращенных без молозива, из хозяйств, благополучных по данной инфекции. В качестве материала для заражения используют надосадочную жидкость легочной суспензии (1:100), обработанную ингибиторами, провереннную на наличие бактериальных контаминантов, или тканевый материал предварительно пропускают через мембранные фильтры. Заражение проводят интраназально или трахеально. Инкубационный период обычно составляет 7-10 суток, диагностический убой целесообразно проводить через 15-20 суток. Из клинических симптомов наиболее типичен кашель, температурная реакция может быть слабой или совсем отсутствовать. В положительных случаях в легких обнаруживают характерные изменения, подтверждением служит реизоляция культур, наличие серологического ответа.
|